Đồ án tốt nghiệp: Thử nghiệm cố định Saccharomyces cerevisiae và Pichia anomala trên chất mang PVA-alginate và ứng dụng trong lên men thu nhận ethanol từ vỏ cacao

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CÔNG NGHỆ TP. HỒ CHÍ MINH

ĐỒ ÁN TỐT NGHIỆP THỬ NGHIỆM CỐ ĐỊNH SACCHAROMYCES

CEREVISIAE VÀ PICHIA ANOMALA TRÊN CHẤT

MANG PVA – ALGINATE VÀ ỨNG DỤNG TRONG

LÊN MEN THU NHẬN ETHANOL TỪ VỎ CACAO

Ngành:

CÔNG NGHỆ SINH HỌC

Chuyên ngành: CÔNG NGHỆ SINH HỌC

Giảng viên hướng dẫn : ThS. Trần Thị Tưởng An

Sinh viên thực hiện : Ngô Lê Hồng Duyên

MSSV: 1211100062 Lớp: 12DSH02

TP. Hồ Chí Minh, 2016

Đồ án tốt nghiệp

LỜI CAM ĐOAN

Tôi xin cam đoan rằng, đồ án tốt nghiệp “Thử nghiệm cố định

Saccharomyces cerevisiae và Pichia anomala trên chất mang PVA-alginate và

ứng dụng trong lên men thu nhận ethanol từ vỏ cacao” là công trình nghiên cứu

thực sự của cá nhân tôi, được thực hiện trên cơ sở nghiên cứu lý thuyết, kiến thức

và dựa trên cơ sở nghiên cứu lý thuyết và dựa trên sự hướng dẫn khoa học của Th.S

Trần Thị Tưởng An.

Các số liệu sử dụng trong đồ án là trung thực và có nguồn gốc cụ thể, rõ

ràng. Nội dung đồ án có tham khảo và sử dụng các tài liệu thông tin được đăng tải

trên các sách, tác phẩm, tạp chí và các trang web theo danh mục tài liệu của khóa

luận.

Tp. Hồ Chí Minh, ngày 19 tháng 08 năm 2016 Sinh viên thực hiện

Ngô Lê Hồng Duyên

Đồ án tốt nghiệp

LỜI CẢM ƠN

Lời đầu tiên em xin cảm ơn Ban giám hiệu trường Đại học Công nghệ Tp. Hồ Chí Minh, Ban chủ nhiệm khoa Công nghệ sinh học – Môi trường – Thực phẩm đã tạo điều kiện cho em được thực hiện đồ án này. Em xin cảm ơn toàn thể thầy cô trong khoa Công nghệ sinh học – Môi trường – Thực phẩm đã tận tình truyền đat các kiến thức và kỹ năng để em có thể hoàn thành khóa luận này.

Trong suốt khoảng thời gian làm khóa luận tốt nghiệp tại phòng thí nghiệm Năng Lượng Sinh Học và Biomass – Đại học Bách Khoa Tp.Hồ Chí Minh. Em xin chân thành gửi lời cảm ơn đến:

Cô Trần Thị Tưởng An, trường Đại học Bách Khoa Tp.Hồ Chí Minh. Cảm ơn cô đã gợi ý đề tài, tạo điều kiện cho em được làm khóa luận tại đại học Bách Khoa, tận tình hướng dẫn chi tiết công việc, luôn theo sát chỉ dẫn, động viên em, hỗ trợ kinh phí suốt quá trình làm khóa luận. Em xin gửi lời cảm ơn đến các anh, các chị làm việc trong phòng thí nghiệm

đã nhiệt tình hỗ trợ em trong suốt thời gian làm việc ở đây. Cảm ơn ba mẹ người đã luôn luôn bên cạnh động viên tinh thần em trong những lúc em cảm thấy khó khăn nhất. Cuối cùng, cảm ơn tất cả các bạn trong phòng thí nghiệm những người bạn đã

luôn bên cạnh và giúp đỡ em trong mọi việc.

Mặc dù đã cố gắng để thực hiện đề tài một cách hoàn chỉnh nhất. Song do buổi đầu mới làm quen với công tác nghiên cứu khoa học, tiếp cận với thực nghiệm và máy móc hiện đại cũng như hạn chế về kiến thức và kinh nghiệm nên không tránh khỏi những thiếu sót. Em rất mong được sự góp của quý thầy cô và các bạn để kiến thức của em trong lĩnh vực này được hoàn thiện hơn. Một lần nữa em xin chân thành cảm ơn. Tp. Hồ Chí Minh, ngày 19 tháng 08 năm 2016

Sinh viên thực hiện

Ngô Lê Hồng Duyên

Đồ án tốt nghiệp

MỤC LỤC

MỤC LỤC ............................................................................................................................. i

DANH MỤC CÁC TỪ VIẾT TẲT ...................................................................................... v

DANH MỤC BẢNG ........................................................................................................... vi

DANH MỤC HÌNH ẢNH .................................................................................................. vii

LỜI MỞ ĐẦU ....................................................................................................................... 1

1. Đặt vấn đề .................................................................................................................. 1

2. Mục tiêu đề tài ........................................................................................................... 2

3. Nội dung nghiên cứu .................................................................................................. 2

CHƯƠNG 1. TỔNG QUAN TÀI LIỆU ............................................................................... 3

1.1 Giới thiệu về bioethanol ......................................................................................... 3

1.1.1 Khái niệm ........................................................................................................ 3

1.1.2 Các thế hệ bioethanol ...................................................................................... 6

❖

Bioethanol thế hệ thứ nhất ..................................................................................... 6

❖

Bioethanol thế hệ thứ hai ....................................................................................... 6

❖

Bioethanol thế hệ thứ ba ........................................................................................ 6

1.2 Quy trình sản xuất ethanol ..................................................................................... 7

1.2.1

Tiền xử lý ........................................................................................................ 8

1.2.2

Thủy phân ..................................................................................................... 10

1.2.3

Lên men ........................................................................................................ 11

1.2.4 Chưng cất, thu hồi bioethanol ....................................................................... 11

1.3 Nguồn nguyên liệu sản xuất bioethanol ............................................................... 13

1.3.1 Một số nguồn nguyên liệu sản xuất bioethanol ............................................ 13

1.3.2

Sản xuất bioethanol sử dụng nguồn nguyên liệu vỏ cacao ........................... 15

1.3.2.1

Giới thiêu về vỏ cacao ............................................................................... 15

1.3.2.2

Tình hình sản xuất cacao ở Việt Nam ....................................................... 15

1.4 Cố định tế bào ...................................................................................................... 17

1.4.1 Định nghĩa và các phương pháp cố định....................................................... 17

1.4.2 Ưu điểm & nhược điểm ................................................................................ 20

1.4.3 Chất mang .................................................................................................... 22

1.4.4

Saccharomyces & Pichia .............................................................................. 26

1.4.5 Một số nghiên cứu về cố định tế bào ............................................................ 28

CHƯƠNG 2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU ...................................... 32

2.1 Thời gian và địa điểm thực hiện đề tài ................................................................. 32

2.1.1

Thời gian nghiên cứu .................................................................................... 32

2.1.2 Địa điểm nghiên cứu ..................................................................................... 32

iii

Đồ án tốt nghiệp

2.1.3 Đối tượng nghiên cứu ................................................................................... 32

2.1.4 Nội dung nghiên cứu ..................................................................................... 32

2.2 Vật liệu và thiết bị ................................................................................................ 32

2.2.1 Nguyên vật liệu dùng trong nghiên cứu ........................................................ 32

2.2.2 Hóa chất sử dụng .......................................................................................... 33

2.2.3

Thiết bị và dụng cụ ....................................................................................... 34

2.3

Phương pháp nghiên cứu ...................................................................................... 35

Sơ đồ bố trí thí nghiệm ................................................................................. 35

2.3.1

Phương pháp bố trí thí nghiệm ..................................................................... 36

2.3.2

2.4

Phương pháp phân tích ......................................................................................... 39

Phương pháp Vi sinh..................................................................................... 39

2.4.1

Phương pháp sinh hóa ................................................................................... 42

2.4.2

2.4.3 Xử lý số liệu .................................................................................................. 43

CHƯƠNG 3. KẾT QUẢ VÀ BÀN LUẬN ........................................................................ 44

3.1 Quá trình cố định tế bào ....................................................................................... 44

3.1.1 Cảm quan nồng độ sodium alginate .............................................................. 44

3.1.2 Ảnh hưởng của nồng độ PVA ....................................................................... 45

3.2 Kết quả sử dụng chế phẩm S.cerevisia và P.anomala cố định trên PVA để lên men thu bioethanol từ vỏ cacao ...................................................................................... 48

3.2.1 Ảnh hưởng của thời gian (giờ) lên men ........................................................ 48

3.2.2 Ảnh hưởng của pH ........................................................................................ 52

3.2.3 Ảnh hưởng của tỷ lệ nấm men ...................................................................... 54

3.3 Khả năng tái sử dụng chế phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố định trên gel PVA để lên men ........................................................................................................ 57

CHƯƠNG 4. KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ ...................................................................... 61

4.1 Kết luận ................................................................................................................ 61

4.2 Kiến nghị .............................................................................................................. 61

TÀI LIỆU THAM KHẢO .................................................................................................. 62

TÀI LIỆU TIẾNG VIỆT ................................................................................................. 62

TÀI LIỆU NƯỚC NGOÀI ............................................................................................. 62

TÀI LIỆU TỪ INTERNET ............................................................................................. 63

Đồ án tốt nghiệp

DANH MỤC CÁC TỪ VIẾT TẲT

DNS 3,5-dibnitrosalycylic acid

P.anomala Pichia anomala

PL Phụ lục

PVA Polyvinyl alcohol

S. cerevisiae Saccharomyces cerevisiae

SDA Sabouraud Dextrose Agar

SDB Sabouraud Dextrose Broth

SHF Separate hydrolysis and fermentation

SSCF Simultaneous saccharification and co-fermentation

SSF Simultaneous saccharification and fermentation

TSD Tái sử dụng

Đồ án tốt nghiệp

DANH MỤC BẢNG

Bảng 1.1 Đặc tính hóa lý của ethanol

Bảng 1.2 Thông số của bioethanol so với xăng

Bảng 1.3 Các phương pháp tiền xử lý

Bảng 1.4 Các kỹ thuật lên men thu nhận bioethanol

Bảng 2.1 Thông tin thiết bị sử dụng trong quá trình nguyên cứu

Bảng 2.2 Các nghiệm thức khảo sát khả năng cố định tế bào của Saccharomyces

cerevisiae

Bảng 2.3 Các nghiệm thức khảo sát khả năng cố định tế bào của Pichia anomala

Bảng 2.4 Bố trí các nghiệm thức thí nghiệm

Đồ án tốt nghiệp

DANH MỤC HÌNH ẢNH

Hình 1.1. Công thức cấu tạo ethanol

Hình 1.2 Sơ đồ chuyển hóa sinh khối lignocellulose thành bioethanol

Hình 1.3 Trái cacao

Hinh 1.4 Công thức cấu tạo của phân tử polyvinyl alcohol

Hinh 1.5 Công thức cấu tạo của phân tử polyvinyl acetate

Hình 1.6 Saccharomyces cereviciae

Hình 1.7 Pichia anomala

Hình 2.1 Sơ đồ bố trí thí nghiệm

Hình 3.1. Mật độ tế bào cố định trên PVA

Hình 3.2. Hiệu suất cố định tế bào

Hình 3.3. Mật độ tế bào cố định trên PVA

Hình 3.4. Hiệu suất cố định tế bào

Hình 3.5 Sự thay đổi các thành phần theo thời gian lên men

Hình 3.6 Sự thay đổi các thành phần theo pH trong môi trường lên men.

Hình 3.7 Sự thay đổi các thành phần theo tỷ lệ nấm men cố định bổ sung vào môi

trường lên men.

vii

Hình 3.8 Sự thay đổi các thành phần qua số lần tái sử dụng.

Đồ án tốt nghiệp

LỜI MỞ ĐẦU

Như chúng ta đã biết, nền kinh tế thế giới hiện nay và trong tương lai phụ

1. Đặt vấn đề

thuộc rất nhiều vào nhiên liệu hóa thạch, mặc dù nguồn tài nguyên này trong đó có

dầu thô là tác nhân gây ô nhiễm môi trường rất lớn và được báo động là đang đi

vào giai đoạn cạn kiệt như một sự tất yếu khi tài nguyên tự nhiên hữu hạn bị khai

thác tối đa.

Bên cạnh đó, nhu cầu bảo vệ môi trường sống trên trái đất được trong sạch

dài lâu cũng như cần phát triển kinh tế với một tốc độ cao và trên quy mô rộng làm

cho an ninh năng lượng toàn cầu ngày càng bị đe dọa nghiêm trọng. Do đó, nhiệm

vụ tìm kiếm nguồn thay thế cho nhiên liệu hóa thạch đã được đặt ra trong gần nửa

thế kỷ qua và ngày càng trở nên cấp thiết.

Bioethanol là nguồn nhiên liệu đầy hứa hẹn trong tương lai thay thế cho

nguồn nhiên liệu hóa thạch, bởi nó là nguồn nhiên liệu có thể tái tạo. Bioethanol

tồn tại ở dạng lỏng có thể được sử dụng làm nguồn nhiên liệu mới cho tương lai.

Tuy nhiên, những sản phẩm bioethanol có nguồn gốc từ tinh bột dễ bị biến động do

tinh bột là nguồn lương thực của con người. Việc sử dụng tinh bột hoặc nguyên

liệu giàu đường sẽ lập tức đẩy giá của lương thực và bioethanol tăng cao hơn so với

sản xuất bằng con đường hóa học. Trong khi đó, giá của vật liệu phải chi trả 40–

75% tổng chi phí của sản xuất ethanol. Vì vậy, việc thay thế nguồn nguyên liệu để

sản xuất bioethanol là vô cùng cần thiết. Các nguồn nguyên liệu là các phụ phẩm

của ngành nông nghiệp như rơm rạ, bã mía, vỏ cacao…đang là sự lựa chọn hàng

đầu hiện nay, việc sản xuất bioethanol từ các phụ phẩm nông nghiệp giúp giảm giá

thành bioethanol, hạn chế rác thải nông nghiệp, tăng năng suất lao động của người

nông dân, ….

Bioethanol thường được sản xuất bằng nấm men tự do, tuy nhiên lên men

bằng nấm men tự do gặp một số vấn đề như thời gian lên men dài, năng suất lên

men thấp, tiêu tốn khá nhiều năng lượng để tách nấm men sau quá trình lên men.

Để khắc phục, ta dùng phương pháp cố định nấm men với nhiều ưu điểm như: tốc

Đồ án tốt nghiệp

độ sử dụng glucose, tốc độ sinh tổng hợp ethanol cao hơn dù diện tích bề mặt dùng

để vận chuyển chất dinh dưỡng nhỏ hơn, và khả năng tái sử dụng nấm men cố định

giúp giảm thời gian nuôi cấy và thời gian lên men, ổn định hoạt tính của nấm men.

Bên cạnh đó, vỏ cacao là nguồn phế phẩm nông nghiệp giàu lignocellulose

nên có thể sử dụng để lên men tạo bioethanol rất hiệu quả, tận dụng được nguồn vỏ

phế phẩm. Với sản lượng hằng năm khoảng 1-2 tấn/ha, lượng vỏ thải ra là gánh

nặng rất lớn đối với môi trường. Bên cạnh đó, cây cacao cho thu hoạch gần như

quanh năm nên nguồn cung nguyên liệu khá thuận lợi. Nguồn vỏ ca cao khổng lồ

bị bỏ phí bấy lâu nay có thể được tận dụng rất hiệu quả để thử nghiệm lên men

ethanol sinh học.

Do vậy, đề tài “Thử nghiệm cố định Saccharomyces cerevisiae & Pichia

anomala trên chất mang PVA-alginate và ứng dụng trong lên men thu nhận

ethanol từ vỏ ca cao” thực hiện để khảo sát lên men ethanol bằng phương pháp cố

định tế bào và ứng dụng nguồn nguyên liệu phế phẩm nông nghiệp là vỏ trái cacao.

Khảo sát các yếu tố ảnh hưởng đến quá trình cố định tế bào nấm men

2. Mục tiêu đề tài

Saccharomyces cerevisiae và Pichia anomala sử dụng chất mang PVA-alginate,

ứng dụng trong lên men ethanol từ vỏ cacao.

3. Nội dung nghiên cứu

Để đạt được mục tiêu đề tài, tiến hành nghiên cứu các nội dung sau:

- Khảo sát chất mang PVA-alginate để cố định S. cerevisiae và P.anomala

- Khảo sát các yếu tố chính ảnh hưởng đến quá trình lên men khi sử dụng chế

phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố định trên chất mang PVA-alginate.

- Thử nghiệm khả năng sử dụng chế phẩm S.cerevisiae và P.anomala cố định

trên chất mang PVA để lên men thu bioethanol từ vỏ cacao

Đồ án tốt nghiệp

CHƯƠNG 1. TỔNG QUAN TÀI LIỆU

1.1 Giới thiệu về bioethanol

1.1.1 Khái niệm

Bioethanol hay còn gọi là ethanol sinh học, là một dạng ethanol (hình 2.1)

không tổng hợp bằng con đường hóa học mà được sản xuất bởi các vi sinh vật

thông qua quá trình lên men đường từ các vật liệu sinh học có chứa đường hay các

vật liệu có thể chuyển đổi thành đường như tinh bột, cellulose, lignocellulose,

thường là từ các loại ngũ cốc như ngô, lúa mì, đậu tương hoặc từ vỏ cây, bã mía,...

nhờ tác dụng của enzyme.

Hình 1.1. Công thức cấu tạo ethanol (wikipedia)

Quá trình lên men đường tạo thành ethanol và carbon dioxide:

C6H12O6 → 2C2H5OH + 2CO2

Ethanol dùng làm nhiên liệu cho động cơ đốt trong sẽ bị đốt cháy hòa trộn

với oxygen trong động cơ tạo ra carbon dioxide, nước và nhiệt lượng:

C2H6O + 3O2 → 2CO2 + 3H2O+ nhiệt lượng

Tổng hợp 2 công thức trên như sau:

C6H12O6 + 6O2 → 6CO2 + 6H2O+ nhiệt.

Nhiệt lượng sinh ra trong quá trình dùng để chạy máy. CO2 được sinh ra

trong quá trình này là carbon trung tính (Carbon neutral) khác với loại khí carbon

được tạo thành sau khi đốt các nhiên liệu hóa thạch. Carbon được tạo ra sau khi đốt

các nhiên liệu hóa thạch không nằm trong chu trình carbon nên việc đốt chúng sẽ

làm tăng hàm lượng carbon trong không khí gây hiệu ứng nhà kính.

Đồ án tốt nghiệp

Bảng 1.1 Đặc tính hóa lý của ethanol

Công thức cấu tạo C2H5OH

Khối lượng phân tử 46,07 g/mol

Hình dạng Chất lỏng không màu (giữa -117oC &78oC)

Độ hòa tan Hòa tan không giới hạn

Khối lượng riêng 0,789 kg/l

Nhiệt độ sôi 78,5oC (173oF)

Nhiệt độ đông -117oC

Điểm bắt lửa 12,8oC (thấp nhất)

Điểm nóng chảy 425oC

Giới hạn nổ Thấp hơn 3,5% v/v; lớn hơn 19% v/v

Áp suất hơi 50mmHg (38oC)

Giá trị nhiệt cao hơn 29.800 kJ/L (ở 20oC)

Giá trị nhiệt thấp hơn 21.090 kJ/L (ở 20oC)

Nhiệt dung riêng 60 Kcal/Kg

15,9 Độ acid (pKa)

Độ nhớt 1.200 mPa.s (ở 20oC)

1,36 (ở 25oC) Chỉ số khúc xạ (nD)

Chỉ số octane 99

(nguồn: Graeme M.Walker)

Đồ án tốt nghiệp

Quá trình sản xuất rượu ethanol làm nhiên liệu sinh học sạch gồm có 3 giai

đoạn:

- Lên men đường với chất men (microbial yeast).

- Cất rượu: Rượu ethanol dùng để làm nhiên liệu cho xe ô tô phải chứa rất ít

nước bằng phương pháp chưng cất rượu, nhưng rượu thuần chỉ đạt đến giới

hạn 95-96%. Loại rượu này có thể dùng chạy máy, nhưng không thể hòa trộn

với xăng dầu.

- Làm khô: Đây là phương pháp làm khô rượu ethanol bằng cách dùng sàng

phân tử ZEOCHEM Z3-03, hoặc thêm chất hydrocarbon benzene hoặc dùng

chất calcium oxide như là chất làm khô để khử nước trong rượu.

Ethanol thu được sau quá trình chưng cất ngũ cốc lên men có dạng hỗn hợp

gồm nước và ethanol, cần phải tách nước để lấy ethanol khan trước khi trộn với

xăng. Cũng có thể dùng ethanol chưa khan nước (hydrous ethanol) nhưng chỉ cho

các loại động cơ xe có chế tạo tương thích.

Bioethanol có thể được sử dụng như một nguyên liệu lỏng trong động cơ đốt

trong do nó có chỉ số octane cao và tính chất hóa lý tương đương với xăng (bảng

2.2). Chỉ số octane càng cao thì chỉ số chống gõ (anti-knocking index) tránh được

tiếng gõ làm tổn thương lòng máy. Có thể sử dụng bioethanol nguyên chất hoặc

pha trộn với xăng dầu. Nếu sử dụng E10 (10% ethanol) thì không cần phải thay đổi

kết cấu xe.

Bảng 1.2 Thông số của bioethanol so với xăng

Tỷ Độ nhớt Điểm Năng lượng Năng Chỉ số Nhiên

trọng chớp (tại 20oC lượng octane liệu tượng (mm2/s)

nháy (oC) MJ/kg) (MJ/L) (RON) đương (L) (kg/L)

Xăng 0,76 0,6 <21 42,7 32,45 92 1

Bioethanol 0,79 1,5 <21 26,8 21,17 129 0,65

(nguồn: paul 2006)

Đồ án tốt nghiệp

1.1.2 Các thế hệ bioethanol

Hiện nay dựa trên nguồn nguyên liệu sản xuất mà nguời ta chia bioethanol

thành các thế hệ khác nhau. Bioethanol duợc chia thành 3 thế hệ chính:

❖ Bioethanol thế hệ thứ nhất

Bioethanol thế hệ thứ nhất được sản xuất từ đuờng bằng quá trình lên men

các loại đường có nguồn gốc từ lúa mì, ngô, củ cải đường, mía, mật rỉ đuờng.

Hạn chế của việc sản xuất bioethanol thế hệ thứ nhất là tạo gánh nặng cho

sản xuất nông nghiệp. Ðất nông nghiệp ngày một giảm, không thể cung cấp đủ cho

việc sản xuất bioethanol mà không ảnh hưởng đến nguồn cung cấp thực phẩm

trong nước và bioethanol được tao ra cạnh tranh chi phí với các nguồn năng lượng

hóa thạch.

❖ Bioethanol thế hệ thứ hai

Ðể khắc phục nhược điểm của bioethanol thế hệ thứ nhất, người ta đã sử

dụng nguồn nguyên liệu phế thải hay nguồn nguyên liệu không phải là thực phẩm

để có thể cung cấp nguyên liệu lâu dài, chi phí thấp và có lợi ích cho môi truờng.

Nguồn cung cấp chủ yếu là thân cây, rơm rạ cũng như các loại cây trồng

không phải cây lương thực như cỏ, jatropha… hay các phế phẩm trong sản xuất

nông nghiệp như vỏ chuối, vỏ cacao… với hàm lượng lignocellulose cao.

Biothanol thế hệ thứ hai được sản xuất từ sinh khối lignocellulose (bộ khung

tạo nên tính chất “gỗ” của thực vật) đang trở thành xu hướng hiện nay.Tuy nhiên,

quá trình tiền xử lý lại tiêu tốn khá nhiều chi phí.

Là những nhiên liệu (dầu thực vật, biodiesel, bioethanol, biogas,

❖ Bioethanol thế hệ thứ ba

biomethanol, biobutanol và nhiên liệu sinh học khác) trong đó có bioethanol được

sản xuất từ tảo.

Ðặc điểm nổi bật của nhiên liệu từ tảo là không ảnh hưởng đến nguồn nước

ngọt, có thể sản xuất bằng cách sử dụng nước biển và nước thải, tương đối vô hại

Đồ án tốt nghiệp

cho môi trường. Nhưng chi phí cho các dự án sản xuất rất cao nên chỉ dừng ở việc

thử nghiệm mà chưa ứng dụng trong quy mô sản xuất lớn.

Cho đến nay, sản xuất cồn sinh học ở Việt Nam vẫn sử dụng nguồn nguyên

liệu từ đường (mía, rỉ đường) và tinh bột (sắn).

1.2 Quy trình sản xuất ethanol

Có rất nhiều nguồn nguyên liệu để sản xuất bioethanol trong đó nguồn

nguyên liệu lignocellulose là nguồn nguyên liệu phong phú nhất. Sau đây là quy

trình sản xuất bioethanol từ nguồn lignocellulose được thể hiện qua sơ đồ hình 2.2.

Hình 1.2 Sơ đồ chuyển hóa sinh khối (Nguồn: Bioresource Technology, 2009)

Đồ án tốt nghiệp

Quá trình lên men ethanol từ các nguồn nguyên liệu lignocellulose cũng

giống như từ tinh bột hay rỉ đường. Bao gồm bốn bước cơ bản:

Tiền xử lý nguyên liệu. -

Thủy phân nguyên liệu. -

Lên men. -

- Tinh chế sản phẩm (chưng cất, tách nước, bốc hơi, tách lỏng rắn) tùy

vào nồng độ cồn mà có phương pháp tinh chế khác nhau. Quá trình này

phụ thuộc nhiều vào công nghệ hóa học nên trong giới hạn của đề tài xin

được không trình bày.

1.2.1 Tiền xử lý

Trong sinh khối lignocellulose thì cellulose là thành phần chính để lên men

bioethanol.

Cellulose và hemicellulose được bảo vệ bởi lớp lignin dày đặc chống lại sự

thủy phân của enzyme.Vì vậy, cần thiết phải có một bước tiền xử lý để phá vỡ

lignin để lộ cellulose và hemicellulose cho quá trình thủy phân của enzyme được

dễ dàng. Tiền xử lý nhằm mục đích giảm kết tinh của cellulose, tăng diện tích bề

mặt sinh khối, loại bỏ hemicellulose, và phá vỡ lignin. Tiền xử lý làm cho cellulose

dễ tiếp cận hơn với các enzyme để chuyển đổi polyme carbohydrate thành đường

lên men có thể đạt được nhanh hơn, dẫn đến yêu cầu enzyme sử dụng sẽ giảm, chi

phí cũng sẽ giảm. Quá trình tiền xử lý phải đáp ứng những yêu cầu:

Nâng cao được hiệu quả của quá trình thủy phân tiếp theo.

Hạn chế sự mất mát của hydrocarbon.

Tránh sự tạo thành các sản phẩm phụ làm ức chế quá trình thủy phân và

quá trình lên men.

Phá vỡ được lớp bao bọc của lignin và hemicellulose với cellulose.

Tiết kiệm được chi phí.

Vì các nguyên liệu lignocellulose khác nhau có các đặc tính lý hóa khác

nhau, nên cần áp dụng các công nghệ tiền xử lý phù hợp với các đặc điểm của từng

Đồ án tốt nghiệp

nguyên liệu sinh khối lignocellulose. Tiền xử lý bao gồm các phương pháp cơ học,

hóa lý, hóa học, sinh học,...được tóm tắt trong bảng 2.3.

Bảng 1.3. Các phương pháp tiền xử lý

Phương Tác nhân/ Kĩ Nguyên liệu TLTK pháp thuật

Tác động cơ học Rơm rạ Hideno et al, 2009

Nổ hơi nước Mảnh gỗ cứng, vỏ trấu, bã Guoce Yu &

mía… Shinichi Yano et al, Vật lý 2008 Rơm rạ Nén nước nóng

Azuma et al, 1984 Rơm rạ Vi sóng

Lê Thị Như Ý, 2014 Bã mía Siêu âm

Acid Xuebing Zhao et al, Thân cây ngô, rơm lúa mì, vỏ

2014 cacao, vỏ chuối…

Dung môi hữu Jamshid et al, 2005 Rơm rạ cơ Chất thải nông nghiệp và thân Hóa học Kiềm cây cỏ như rơm rạ. Zhang và Cai, 2008

Tác nhân oxy Rơm rạ hóa Phế phẩm nông nghiệp và lõi Wei và Cheng ,1985 Amoniac nổ sợi bắp Zhong et al, 2009 (AFEX)

Các chất thải nông nghiệp như Sinh học Vi sinh vật Patel et al, 2007 rơm rạ.

Đồ án tốt nghiệp

1.2.2 Thủy phân

Sau quá trình tiền xử lý, cellulose và hemicellulose sẽ bị thủy phân thành

các đường đơn (hexose và pentose). Ở đây, ta quan tâm nhiều đến sự thủy phân

cellulose, do nó là thành phần chính trong sinh khối lignocellulose. Phương trình

phản ứng tổng quát (PT2):

(PT2) (C5H10O5)n + nH2O →nC6H12O6

Dùng acid hoặc enzyme để thủy phân cellulose.

2.3.3.2.1 Thủy phân bằng acid

Vào cuối thế kỉ 19 và đầu thế kỉ 20, quá trình thủy phân được thực hiện bởi

phản ứng giữa cellulose với acid. Acid loãng được sử dụng dưới điều kiện nhiệt độ

cao và áp suất cao, còn acid đậm đặc được sử dụng ở nhiệt độ thấp và áp suất khí

quyển. Quá trình thủy phân bằng acid loãng xảy ra ở điều kiện nhiệt độ và áp suất

cao dẫn đến sự tạo thành các chất độc hại có thể ảnh hưởng không tốt đến quá trình

lên men như các acid hữu cơ có trọng lượng phân tử thấp, dẫn xuất furan và các

hợp chất vô cơ .

2.3.3.2.2 Thủy phân bằng enzyme

Các mắt xích của cellulose có thể bị phân cắt thành các phân tử đường

glucose riêng lẻ bằng cellulase. Cellulase là một phức hệ enzyme có tác dụng thuỷ

phân cellulose thông qua việc thuỷ phân liên kết 1,4-β-glucoside trong cellulose tạo

ra sản phẩm glucose. Nguồn thu cellulase lớn nhất hiện nay là vi sinh vật (nấm,vi

khuẩn). Nhiều loài nấm như Trichoderma, Penicillium, Aspergillus, và T.

emersonii có thể sản sinh ra một số lượng lớn cellulase và hemicellulase ngoại bào.

Vật liệu lignocellulose bị thủy phân bằng enzyme ở điều kiện ôn hòa (50oC và

pH~5), cho phép phân cắt cellulose và hemicellulose một cách hiệu quả mà không

hình thành nên các sản phẩm phụ có thể ức chế hoạt động của enzyme.

Quá trình thủy phân bằng enzyme bị ảnh hưởng bởi các yếu tố như : cấu trúc

nguyên liệu, nhiệt độ , pH, nồng độ enzyme, nồng độ cơ chất, ảnh hưởng của các

Đồ án tốt nghiệp

chất kìm hãm. Mỗi yếu tố đều có sự ảnh hưởng nhất định, tuy nhiên yếu tố nhiệt độ

và pH là ảnh hưởng mạnh nhất .

1.2.3 Lên men

Trong quá trình lên men, các sản phẩm của quá trình thủy phân bao gồm

đường hexose (glucose, mannose và galactose) và pentose (xylose và arabinose) sẽ

được lên men thành ethanol nhờ nấm men Saccharomyces cerevisiae, tổ hợp nhiều

loại nấm men hoặc vi khuẩn (Zymomonas spp).

Bản chất của quá trình lên men là quá trình oxy hóa khử diễn ra trong cơ thể

sinh vật dưới tác động của hệ thống enzyme gọi là quá trình oxy hóa sinh học.

Có rất nhiều phương pháp lên men để tạo bioethanol, bước cuối để biến đổi

sinh khối lignocellulose thành ethanol là thủy phân và lên men có thể được thực

hiện một cách độc lập (SHF), đồng thời (SSF), hay đồng thời kết hợp nhiều chủng

vi sinh vật (SSCF).

Các phương pháp lên men bioethanol được tóm tắt trong bảng 1.4.

1.2.4 Chưng cất, thu hồi bioethanol

Bioethanol cần phải được tách chiết ra khỏi dịch lên men và được tinh chế

thì mới có thể sử dụng. Thu hồi ethanol từ dịch lên men bằng quá trình chưng cất

hoặc kết hợp quá trình chưng cất với quá trình hấp phụ. Để thu cồn tuyệt đối người

ta có thể dùng các phương pháp sau:

• Chưng phân tử, chưng trích ly.

• Hấp phụ rây phân tử.

• Dùng Na2SO4, CaSO4, CaCO3, CuSO4 khan để hấp phụ nước.

• Thẩm thấu qua màng lọc.

• Chưng cất và thẩm thấu qua màng.

Giai đoạn này phụ thuộc vào các kỹ thuật, máy móc và quá trình thiết bị nên

trong giới hạn đề tài này không nghiên cứu.

Đồ án tốt nghiệp

Bảng 1.4. Các kỹ thuật lên men thu nhận bioethanol

Phương pháp Nguyên tắc Ưu điểm Nhược điểm

Ức chế hoạt tính Thủy phân và lên Thủy phân và lên Là một quá enzyme bởi sản phẩm men được thực hiện men riêng rẽ trình gồm hai cuối. trong điều kiện tối ưu pha tách biệt, (separate hydrolysis Thời gian thủy phân của mỗi quá trình, thủy phân and fermentation – dài  nhiễm khuẩn rất không phụ thuộc vào nguyên liệu và SHF) cao. nhau. lên men glucose

Ứng dụng quy mô tạo ethanol.

công nghiệp.

Không thể tái sử dụng Thủy phân và lên Là quá trình lên Không cần phải

nấm men vì nó ở trạng men đồng thời men đồng thời tách glucose khỏi cơ

thái hỗn hợp của dịch sau (Simultaneous với thủy phân chất lignocellulose 

lên men. Saccharification cơ chất. tránh được thất thoát

Ethanol tạo thành sẽ and Fermentation- glucose.

quay lại ức chế cellulase SSF) Thời gian lên men

ngắn  tránh được Ethanol thu được không

hiện tượng tạp nhiễm. cao.

Nhiệt độ của quá trình Thủy phân và lên Là quá trình lên Sản phẩm

thủy phân bằng enzyme men đồng thời kết men kết hợp với hemicellulose sau tiền

và lên men ethanol khác hợp các giống vi các giống vi xử lý không cần tách

nhau đáng kể , làm cho sinh vật sinh vật diễn ra khỏi thành phần sợi

việc tối ưu hóa đồng thời (Simultaneous đồng thời với cellulose.

hai hoạt động rất khó. saccharification and quá trình đường

cofermentation- hóa cơ chất.

SSCF)

Đồ án tốt nghiệp

1.3 Nguồn nguyên liệu sản xuất bioethanol

1.3.1 Một số nguồn nguyên liệu sản xuất bioethanol

Công nghệ sản xuất bioethanol gồm 3 bước chính:

Tinh bột, cellulose → glucose → ethanol

Dựa vào 3 bước đơn giản ta có các nguồn nguyên liệu sản xuất:

- Ethanol được sản xuất từ đường

Đây là cách nhanh chóng và dễ dàng xử lý nguyên liệu đơn giản, nấm men

sử dụng đường trong điều kiện kỵ khí… nấm men tiết ra các enzyme thủy phân

đường (C6H12O6) tạo ra một số sản phẩm bao gồm acid lactic, hydrogen, carbon

dioxide (CO2), và ethanol (C2H5OH).

- Ethanol sản xuất từ tinh bột

Sản xuất ethanol từ nguyên liệu tinh bột (như bắp, lúa mì, và sắn) có bổ

sung nước. Tinh bột đầu tiên phải được thủy phân thành các loại đường đơn. Qua

trình này được gọi là saccharification, đòi hỏi nhiều năng lượng hơn và làm tăng

chi phí sản xuất. Nhưng do nguyên liệu dồi dào nên hiện đang là quy trình sản xuất

công nghiệp.

- Ethanol sản xuất từ Cellulose

Nguyên liệu vô tận, nhưng enzyme để thủy phân chúng còn đắt đỏ, quá trình

thủy phân cũng khó khăn vì vậy làm tăng giá thành, nhưng đây là hướng nghiên

cứu của nhiều nhà khoa học, vì nếu thành công sẽ cho hiệu quả kinh tế cao, không

đe dọa an ninh lương thực thế giới.

Xuất phát từ điều kiện Việt Nam là một nuớc nông nghiệp có sản phẩm

nông nghiệp rất phong phú nên có thể sản xuất ethanol từ các nguồn nguyên liệu

khác nhau trong đó lignocellulose là nguồn nguyên liệu phong phú nhất.

Các loại cây trồng như liễu, bạch dương, bạch đàn..., các phế phẩm nông

nghiệp (rơm, bã mía, fruit watse), các phế thải của công nghiệp gỗ, gỗ thải đều

thích hợp để làm nguyên liệu sản xuất bioethanol.

Đồ án tốt nghiệp

Cứ khoảng 2-4 tấn vật liệu gỗ khô hoặc cỏ khô đã có thể cho 1 tấn

bioethanol Nguyên nhân khiến nguời ta chuyển sang sản xuất bioethanol từ sinh

khối lignocellulose là vì các nguyên liệu này sẵn có và rẻ tiền hơn so với các loại

tinh bột ngũ cốc hoặc cây trồng khác, đặc biệt là với những nguồn chất thải hầu

như không có giá trị kinh tế nên giúp tiết kiệm chi phí nguyên liệu, tuy nhiên quá

trình chuyển hóa các vật liệu này sẽ khó khăn hơn.

Nguyên liệu chứa lignocellulose khác nhau có thành phần cấu tạo không

giống nhau nhưng về cơ bản chúng được cấu tạo từ 3 hợp chất cellulose,

hemicellulose, lignin. Các thành phần cấu tạo nên lignocellulose (cellulose,

hemicellulose, lignin) là các đối tượng khó bị phân hủy. Tính khó phân hủy gia

tăng lên nhiều lần khi chúng liên kết với nhau và với các thành phần khác nữa tạo

thành một thể cấu trúc chặt chẽ và phức tạp.

Các vi sợi cellulose, lignin, hemicellulose được sắp xếp theo những nguyên

tắc nhất định để hình thành nên cấu trúc vi sợi. Với cấu trúc nhiều lớp gồm nhiều

thành phần có bản chất hóa học khác nhau, lignocellulose có độ bền vật lý cao, rất

khó xâm nhập đối với các vi sinh vật và enzyme. Hơn nữa để phân hủy bất cứ

thành phần nào của phức hợp một cách hiệu quả và triệt để cần phải tác động đến

nhiều thành phần khác. Ví dụ, để phân giải lignocellulose thì cần đồng thời tác

động lignin, cellulose và hemicellulose.

Cellulose chiếm 40-60% trọng lượng khô. Công thức phân tử (C6H10O5)n.

Là thành phần cấu tạo chủ yếu của màng tế bào thực vật và là hợp chất chính của

nguyên liệu chứa cellulose để sản xuất ethanol. Nguyên liệu càng giàu cellulose thì

sản xuất ethanol càng đạt hiệu quả cao.

Hemicellulose chiếm 20-40% trọng lượng khô, dễ bị thủy phân hơn so với

cellulose. Khi thủy phân đến cùng, hemicellulose tạo ra các monosaccaride chủ yếu

là hexose, pentose. Trong đó hexose có khả năng lên men tạo ethanol còn pentose

không có khả năng này.

Lignin chiếm 10-25% trọng lượng khô, lignin là một polyphenol có cấu trúc

mở. Trong tự nhiên, lignin chủ yếu đóng vai trò chất liên kết trong thành tế bào

Đồ án tốt nghiệp

thực vật, liên kết chặt chẽ với mạng cellulose và hemicellulose. Rất khó để có thể

tách lignin ra hoàn toàn trong quá trình sản xuất ethanol từ cellulose và nó hoàn

toàn không bị thủy phân để tạo các hợp chất có khả năng lên men tạo ethanol. Vì

vậy, lignin là thành phần không mong muốn trong quá trình sản xuất ethanol từ

cellulose.

1.3.2 Sản xuất bioethanol sử dụng nguồn nguyên liệu vỏ cacao

1.3.2.1 Giới thiêu về vỏ cacao

- Tên khoa học: Musa Paradisiaca

- Giới: Plantae

- Ngành: Magnoliophyta

- Lớp: Zingiberiadae

- Bộ: Zingiberales

- Họ: Musaceae

- Chi: Musa

Hình 1.3. Trái cacao (Nguồn: navitasnaturals)

Theo các nhà chuyên môn, sản xuất ca cao của Việt Nam đang có nhiều lợi

1.3.2.2 Tình hình sản xuất cacao ở Việt Nam

thế và cơ hội như chất lượng tốt, nhu cầu tiêu thụ trên thế giới cao, đặc biệt là châu

Á.

Đồ án tốt nghiệp

Ông Lương Văn Tự, Chủ tịch Vicofa cho biết, tính đến tháng 11/2013, diện

tích cacao cả nước đạt 22.110 ha. Trong đó, có nhiều tỉnh hiện có diện tích trên

1.000 ha như Bến Tre 7.342 ha; Bà Rịa-Vũng Tàu 2.787 ha; Tiền Giang 2.578 ha;

Đắk Lắk 2.554 ha; Bình Phước 1.310 ha; Đồng Nai 1.015 ha; Lâm Đồng 1.700 ha;

Vĩnh Long 1.244 ha… Mục tiêu đến năm 2015, diện tích cacao cả nước sẽ đạt

60.000 ha và được nâng lên 80.000 ha vào năm 2020.

Từ năm 2006-2010: Trung tâm Khuyến nông Khuyến ngư đã phối hợp với

các địa phương triển khai được gần 1.000 ha, với tổng kinh phí là 4.466 triệu đồng

xây dựng mô hình trồng thâm canh ca cao ,kinh phí khuyến nông dành cho mô hình

thâm canh ca cao ngày càng tăng (cụ thể năm 2009 là 1,2 tỷ đồng; năm 2010 là

2,170 tỷ đồng). Mô hình trồng thâm canh cacao đã giúp cho người nông dân thay

đổi tập quán canh tác lạc hậu bằng những kỹ thuật sản xuất ca cao tiên tiến (giống,

thâm canh tổng hợp, tưới nước tiết kiệm, sử dụng phân bón sinh học....) đang được

áp dụng rộng rãi trong nước và thế giới nhằm nâng cao năng suất, chất lượng. Năng

suất bình quân của mô hình trình diễn đạt 2 tấn hạt/ha có nơi đạt 2,5 tấn hạt/ha

(trồng 2000- Bù Đăng Bình Phước), năng suất của mô hình hết thời kỳ kiến thiết cơ

bản (KTCB) đạt 500 đến 1000 kg hạt khô/ha (năm 2005).

Đã có nhiều điển hình thâm canh cacao tốt ở các tỉnh, mô hình cacao hữu cơ

ở Bà Rịa Vũng Tàu. Đào tạo, tập huấn cho khoảng 7.500 lượt người về kỹ thuật

trồng thâm canh cây cacao. Tổ chức diễn đàn công nghệ về cacao tại Bến Tre;

cacao trồng xen trong vườn điều tại Bình Phước. Thông tin tuyên truyền: đã hoàn

thiện nội dung cuốn sách “Kỹ thuật trồng cây cacao” và đã phát hành 1.200 cuốn

sách “Trồng thâm canh cacao” đến các tỉnh có trồng cacao. Năm 2011 sẽ phát hành

tiếp 1.000 cuốn nữa. Thiết lập trên trang Web Khuyến nông chuyên mục. Ca cao

Việt Nam nhằm cập nhật thông về kỹ thuật, kinh tế, giá cả cacao trên thế giới cũng

như trong nước (WCF).

Đồ án tốt nghiệp

1.4 Cố định tế bào

1.4.1 Định nghĩa và các phương pháp cố định

Định nghĩa: Kỹ thuật cố định tế bào là “Kỹ thuật bao bọc hoặc định vị các tế

bào còn nguyên vẹn lên một “vùng khồn gian nhất định” nhằm bảo vệ các hoạt tính

xúc tác mong muốn” (Karel và cộng sự, 1985).

Cố định thường là sự bắt chước các hiện tượng xảy ra trong tự nhiên do các

tế bào có thể phát triển trên bề mặt hoặc bên trong các cấu trúc của nguyên liệu có

trong tự nhiên. Nhiều vi sinh vật tự nó có khả năng gắn lên trên những bề mặt khác

nhau trong tự nhiên.

Nhiều quá trình trong công nghệ sinh học thuận lợi hơn nhờ kỹ thuật cố

định, do đó mà nhiều kỹ thuật và chất mang được đưa ra. Những kỹ thuật này có

thể chia thành 4 nhóm chính như là cố định trên bề mặt chất mang rắn, nhốt trong

khung mạng xốp, keo tụ tế bào (tạo hạt), nhốt bằng phương pháp cơ học bên trong

một màng chắn.

Các phương pháp:

2.3.3.2.3 Cố định trên bề mặt chất mang rắn

- Nguyên tắc:

Đây là phương pháp cố định dựa vào tương tác bề mặt giữa tế bào và chất

mang. Các lực liên kết như là lực hấp phụ vật lý, liên kết tĩnh điện như lực Van der

Waal, liên kết ion, tương tác ưa nước, hoặc liên kết cộng hóa trị. Những lực liên kết

này yếu nhưng đủ lớn về số lượng để có thể liên kết hợp lý.

- Ưu điểm:

 Ít hoặc không nguy hiểm đến tế bào

 Đơn giản, dễ thực hiện, nhanh thu được sự cố định.

 Không ảnh hưởng đến quá trình truyền khối.

 Diện tích tiếp xúc giữa tế bào cố định và chất mang lớn hơn so với các kỹ

thuật khác.

 Có thể phục hồi trở lại tế bào tự do.

Đồ án tốt nghiệp

- Nhược điểm

Do không có màng chắn giữa các tế bào và dung dịch cho nên các tế bào dễ

bị tách ra, làm tăng hàm lượng tế bào tự do trong dung dịch.

Nếu điều chỉnh không cẩn thận, sự quá tải trên bề mặt chất mang có thể dẫn

đến làm giảm hoạt tính xúc tác.

Sự thiếu không gian phù hợp giữa tế bào và chất mang có thể sản sinh ra vấn

đề liên quan đến sự cản trở không gian.

- Chất mang

Các vật liệu cellulose: DEAE-cellulose, gỗ, mùn cưa, mùn cưa đã tách

lignine,…

Các vật liệu vô cơ: polygorskite, montmorilonnite, hydromica, sứ xốp, thủy

tinh xốp, vòng Raschig, silicate, hợp chất titanium,…

2.3.3.2.4 Nhốt trong khung mạng xốp (tạo gel)

- Nguyên tắc

Đưa tế bào vào bên trong một mạng đủ chặt để ngăn cản tế bào khuếch tán vào môi

trường xung quanh, trong khi vẫn cho phép sự vận chuyển tự do của các chất dinh

dưỡng và sự trao đổi chất diễn ra.

- Ưu điểm

Có thể đạt được mật độ tế bào trong một đơn vị thể tích chất mang cao hơn

so với canh trường vi sinh vật tự do.

Chất mang có tác dụng bảo vệ tế bào chống lại thực khuẩn hoặc tế bào ngoại

lai cũng như những điều kiện gây stress

- Nhược điểm

Khi tế bào tăng quá nhiều sinh khối sẽ làm giảm độ bền của mạng gel.

Tế bào trên bề mặt tăng lên nhiều lần và dễ thoát ra khỏi mạng gel và phát

triển trong môi trường như là các tế bào tự do.

Đồ án tốt nghiệp

- Chất mang

Polymer tự nhiên:

 Polysaccharide: alginate, к-carrageenan, agar, chitosan và polygalacturonic

acid.

 Polymer khác: gelatin, collagen và polyvinyl alcohol.

 Polymer tổng hợp: polyacrylamide, polyurethane và polyvinyl chloride.

2.3.3.2.5 Keo tụ tế bào (tạo hạt)

- Nguyên tắc:

Sự tập hợp tế bào gia tăng kích thước của khối tế bào hoặc tạo huyền phù tế

bào gắn thành cụm và lắng xuống để dễ dàng sử dụng trong các bình phản ứng. Có

thể là keo tụ tự nhiên hoặc là keo tụ nhân tạo bằng cách tạo thành các liên kết

ngang.

- Ưu điểm

Đơn giản, dễ thực hiện.

Không ảnh hưởng đến quá trình truyền khối.

- Nhược điểm

Do không có màng chắn giữa các tế bào và dung dịch cho nên các tế bào dễ

bị tách ra, làm tăng hàm lượng tế bào tự do trong dung dịch.

2.3.3.2.6 Nhốt bằng phương pháp cơ học bên trong một màng chắn.

- Nguyên tắc

Phương pháp này có thể được thực hiện theo 2 cách sử dụng màng

membrane vi xốp, sử dụng màng vi bao. Phương pháp này giống với phương pháp

nhốt trong khung mạng xốp ở chỗ tế bào tự do trong dung dịch, nhưng không gian

bên trong là trống.

- Ưu điểm

Canh trường lên men không bị lẫn tế bào, do đó sản phẩm tạo thành có thể

không cần lọc.

Đồ án tốt nghiệp

- Nhược điểm.

Khả năng truyên khối kém.

Màng membrane có thể bị bám bẩn do sự hấp phụ cơ chất lên bề mặt màng.

- Chất mang

Membrane làm bằng vật liệu cellulose acetate, cellulose nitrat, polyamide.

1.4.2 Ưu điểm & nhược điểm

❖ Ưu điểm

Hoạt động kéo dài và sự ổn định của chất xúc tác sinh học, chất mang có thể

đóng vai trò như một chất bảo vệ chống lại ảnh hưởng hóa lý của nhiệt độ, pH,

dung môi, hoặc thậm chí là kim loại nặng.

Mật độ tế bào trên một đơn vị thể tích của thiết bị phản ứng sinh học cao hơn,

thời gian phản ứng ngắn hơn và lọai bỏ sự tăng trưởng của những tế bào vi sinh vật

không có lợi.

Sự hấp thu cơ chất tăng và năng suất được cải thiện.

Có thể thực hiện được với quá trình liên tục.

Khả năng chịu đựng được nồng đọ cơ chất cao tăng, và giảm sự ức chế của

sản phẩm cuối.

Với quá trình lên men, có thể thực hiện ở nhiệt độ thấp dẫn đến cải thiện chất

lượng cho một số sản phẩm.

Hoàn thiện sản phẩm dễ dàng hơn do giảm được thủ tục tách chiết và lọc, do

đó giảm giá thành cho thiết bị và yêu cầu về năng lượng.

Sự tái sinh và tái sử dụng chất xúc tác sinh học cho nhiều thời của sự vận

hành gián đoạn mà không phải tháo nó ra khỏi thiết bị phản ứng sinh học.

Giảm rủi ro nhiễm vi sinh vật có hại bởi vì mật độ tế bào cao.

Có thể sử dụng thiết bị phản ứng sinh học nhỏ hơn, với sự thiết kế quá trình

công nghệ đơn giản hóa và do đó giảm chi phí vốn.

Đồ án tốt nghiệp

Giảm thời gian sản xuất ra sản phẩm.

❖ Nhược điểm

Khi sử dụng tế bào vi sinh vật cố định, trong môi trường sản xuất, hiện tượng

rò rỉ hay rửa trôi tế bào ra khỏi chất mang ít hay nhiều là điều không thể tránh khỏi.

Do đó, việc thu nhận và tinh sạch sản phẩm đôi khi cũng khá phức tạp.

Tế bào cố định đòi hỏi nhiều nguồn dinh dưỡng và năng lượng đa dạng đảm

bảo khả năng phát triển và hoạt động bình thường. Khi đó, trong hệ thống sử dụng

tế bào cố định có thể xảy ra hiện tượng phân hủy sản phẩm để cung cấp đầy đủ

dinh dưỡng và năng lượng cần thiết cho tế bào. Vì thế mà hiệu suất sử dụng tế bào

cố định có thể thấp hơn hiệu suất sử dụng tế bào tự do.

Do được bao bọc bởi chất mang, thành tế bào, màng tế bào chất, … có thể

gây cản trở việc thẩm thấu cơ chất, sản phẩm và các cấu tử từ môi trường ra vào tế

bào.

Một nhược điểm thường thấy ở những tế bào vi sinh vật được “gói” trong

khuôn có cấu trúc gel, những cơ chất có kích thước phân tử lớn sẽ không có điều

kiện tiếp xúc với tế bào vi sinh vật cố định. Vì thế mà hoạt lực của những tế bào cố

định có thể sẽ thấp hơn so với những tế bào tự do.

Trong những trường hợp cụ thể khi sản xuất ethanol, người ta không quan

tâm đến sự ức chế của ethanol lên hoạt động sống của nấm men khi tiến hành lên

men gián đoạn, khi đó nấm men chỉ được sử dụng một lần rồi được hoạt hóa lại

cho lần sản xuất tiếp theo. Tuy nhiên, mức độ ảnh hưởng của ethanol đến hoạt

động của nấm men là rất lớn trong quá trình lên men liên tục. Sau khi lên men, hoạt

tính của tế bào nấm men có thể bị ức chế bởi ethanol. Tương tự như vậy, khi sử

dụng phương pháp cố định nấm men để sản xuất ethanol liên tục, hoạt tính của nấm

men cố định cần được duy trì và nồng độ ethanol phải thấp để không gây ức chế

đến tế bào nấm men. Như thế thì hiệu suất thu nhận sản phẩm không cao. Nhiều

phương pháp tháo sản phẩm liên tục khỏi thiết bị lên men được nghiên cứu nhằm

tránh những tác động không tốt của sản phẩm lên men đối với nấm men.

Đồ án tốt nghiệp

1.4.3 Chất mang

1.4.3.1 Yêu cầu về chất mang

Chất mang phải có bề mặt lớn với nhóm chức năng để tế bào có thể gắn vào.

Chất mang phải dễ điều khiển và tái sinh.

Với chất mang sử dụng thì khả năng sống của tế bào và khả năng hoạt động

ổn định của chất xúc tác sinh học phải cao và giữ được trong thời gian dài.

Hoạt động của vi sinh vật được cố định phải không bị ảnh hưởng bất lợi bởi

quá trình cố định.

Độ xốp của chất mang phải đồng đều và có thể kiểm soát, cho phép sự trao

đổi tự do của cơ chất, sản phẩm, cofactor, chất khí.

Chất mang phải có tính ổn định cơ học, hóa học, nhiệt, sinh học và không dễ

dàng bị giảm giá trị bởi enzyme, dung môi, sự thay đổi áp suất hoặc lực uốn cắt.

Chất mang và kỹ thuật cố định phải dễ thực hiện, và hiệu quả về kinh tế.

Polyvinyl alcohol (PVOH, PVA, hoặc PVAl) là một polymer tổng hợp tan

1.4.3.2 Chất mang PVA

trong nước. Phân tử polyvinyl alcohol có cấu trúc hóa học tương đối đơn giản

[CH2CH (OH)]n với các nhóm hydroxyl (-OH) nằm đối xứng nhau trong phân tử.

Polyvinyl alcohol có màu trắng và không mùi.

Công thức phân tử polyvinyl alcohol:

Hình 1.4 Công thức cấu tạo của phân tử polyvinyl alcohol

Đồ án tốt nghiệp

Polyvinyl alcohol được sản xuất bằng cách polymer hóa các monomer vinyl

acetate thành cách polymer Polyvinyl alcohol acetate. Polyvinyl alcohol ngay sau

đó sẽ tham gia phản ứng thủy phản ứng thủy phân tạo thành sản phẩm chính là các

Polyvinyl alcohol.

Hình 1.5 Công thức cấu tạo của phân tử polyvinyl acetate

Polyvinyl alcohol bền trong các loại dung môi, dầu thực vật và cả mỡ động

vật. Chúng có khả năng hình thành một màng mỏng với lực căng bề mặt lớn.

Polyvinyl alcohol là loại polymer có khả năng tan trong nước và an toàn.

Đây là những tính chất cơ bản khiến nó trở thành một loại chất mang tốt trong kỹ

thuật cố định tế bào vi sinh vật.

❖ Tính chất của polyvinyl alcohol:

- Polyvinyl alcohol dễ dàng tan trong nước, ít tạo bọt

- Khi nhiệt độ tăng hoặc nồng độ dung dịch giảm thì độ nhớt giảm và

ngược lại. Các tương tác nội phân tử hay tương tác liên phân tử có tác dụng làm

giảm độ nhớt của dung dịch polyvinyl alcohol. Các lực tương tác gây nên tương

tác có thể kể là lực Val der Waals, lực Debye, lực London, lực liên kết hydro và

lực tương tác ion.

- Dung dịch polyvinyl alcohol có chức năng giống như một màng keo

bảo vệ. Sức căng bề mặt của dung dịch polyvinyl alcohol tăng khi mức độ thủy

phân tăng.

- Polyvinyl alcohol có khả năng bám dính cao hơn so với các polymer

tự nhiên tan trong nước khác. Khi mức độ trùng hợp và mức độ thủy phân tăng,

Đồ án tốt nghiệp

tính bám dính của phân tử polyvinyl alcohol trong nước cũng tăng. Dung dịch

polyvinyl alcohol có tính bám dính mạnh đối với các chất ưa nước.

- Polyvinyl alcohol sẽ chuyển sang màu vàng dưới tác dụng của nhiệt

độ. Nhiệt đọ chảy mềm là 150 – 250oC đối với phân tử thủy phân một phần và

210 – 230oC đối với phân tử thủy phân toàn phần. Polyvinyl alcohol bị phân hủy

một phần 200-250oC và phân hủy nhanh chóng khi trên 250oC. Phản ứng phân

hủy là phản ứng làm đứt các liên kết hóa học trong mạch chính của phân tử

polymer, làm thay đổi giá trị khối lượng phân tử trung bình của polymer đưa đến

việc thay đổi tính chất vật lý nhưng không làm thay đổi thành phần hóa học của

nó.

❖ Ứng dụng của polyvinyl alcohol:

- Polyvinyl alcohol được sử dụng rộng rãi trong công nghiệp, đặc biệt là

ngành dược, hóa sinh học,… PVA được sử dụng trong sản xuất giấy, dệt

may, và một loạt các lớp phủ.

- Trong kỹ thuật cố định tế bào vi sinh vật, phân tử polyvinyl alcohol trở

thành một lựa chọn hàng đầu với những ưu điểm nổi bật như không độc,

không gây ung thư, có khả năng gắn kết sinh học và quy trình sản xuất dễ

dàng. Thêm vào đó phân tử polyvinyl alcohol còn có cấu trúc không quá

phức tạp, có thể thay đổi cấu trúc gel tạo thành bằng cách chọn loại

polyvinyl alcohol có phân tử lượng trung bình thích hợp. Đây chính là

những tính chất giúp polyvinyl alcohol trở thành chất mang khi thực hiện cố

định tế bào vi sinh vật.

1.4.3.3 Alginate

Alginate có khá nhiều trong tự nhiên và có thể xuất phát từ 2 nguồn gốc khác

nhau: thành phần cấu trúc của tảo nâu biển (Phaeophyceae), chiếm đến 40% khối

lượng chất khô, polysaccharide màng bao trong các loại vi khuẩn đất. Tuy nhiên tất

cả các alginate thương mại hiện nay đều có nguồn gốc từ tảo.

Alginate là một copolymer không phân nhánh, bao gồm các monomer β-D-

mannuronic acid (gọi tắt là M) và α-L-guluronic acid (G) liên kết với nhau thông

Đồ án tốt nghiệp

qua liên kết 1,4 – glucoside. Các monomer này phân bố trong mạch alginate theo

các block.

- Block M: gồm các gốc mannuronnic acid nối tiếp nhau.

- Block G: gồm các gốc guluronic acid nối tiếp nhau.

- Block MG: gồm các gốc mannuronic acid và guluronic acid luân phiên nối

với nhau.

Hình 1.6 Cấu trúc của alginate (a) các monomer của alginate (b) chuỗi

alginate (c) sự phân bố các block

Cố định nấm men trong gel alginate:

- Quá trình dễ thực hiện.

- Điều kiện cố định ôn hòa, không phải xử lý nhiệt hay xử lý hóa chất. Do đó,

các tế bào cố định không bị mất hoạt tính.

- Alginate là chất mang trơ về mặt hóa học.

- Alginate không có độc tính, thích hợp cho các sản phẩm thực phẩm.

- Độ xốp của mạng gel thuận lợi cho việc khuếch tán cơ chất và sản phẩm.

- Gel alginate vẫn giữ được độ bền khi nhiệt độ lên cao.

- Tuy nhiên độ bền gel alginate giảm theo thời gian lên men.

Đồ án tốt nghiệp

- Gel Ca-alginate không bền hóa học trong dung dịch điện phân và dung dịch

có pH cao.

1.4.4 Saccharomyces & Pichia

1.4.4.1 Saccharomyces

Phân loại khoa học

❖

- Giới: Nấm

- Ngành: Ascomycota

- Lớp: Saccharomycetes

- Bộ: Saccharomycetales

- Họ: Saccharomycetaceae

- Chi: Saccharomyces

- Loài: S. cerevisiae.

Nguồn: Feldmam, Horst 2010

Hình 1.7. Saccharomyces cereviciae (wikipedia)

❖ Đặc điểm hình thái

Tế bào nấm men Saccharomyces cerevisiae có dạng hình cầu hay hình

trứng, có kích thuớc nhỏ, từ 5-6 đến 10-14 µm, sinh sản bằng cách tạo chồi và

tạo bào tử. Nguồn dinh dưỡng chủ yếu của chúng là

đường glucose, galactose, saccharose, maltose như nguồn cacbon, chúng sử

dụng acid amin và muối amon như nguồn nitơ. Điều kiện môi trường ảnh hưởng

Đồ án tốt nghiệp

khá lớn tới tốc độ tăng sinh khối của nấm men. Chúng phát triển tốt ở nhiệt độ 28-

30°C. Độ pH tối ưu của môi trường là 4,5–5,5.

❖ Ứng dụng trong lên men

Con người hiểu biết về nấm men Saccharomyces cerevisiae và những tính

chất của nó mới được hơn 150 năm. Đến đầu thế kỉ 19, nấm men bia, nấm men thải

từ nhà máy rượu bia đã được con người tái sử dụng để làm men sản xuất bánh mì.

Cuối thế kỉ 19, nhiều cải tiến kỹ thuật như hệ thống thông khí (nước Anh), kỹ thuật

li tâm để tách nấm men ra khỏi môi trường tăng trưởng (Mỹ) đã được dùng để sản

xuất men bánh mì.

❖

1.4.4.2 Pichia

Phân loại khoa học

Giới: Nấm

Ngành: Ascomycota

Lớp: Saccharomycetes

Bộ: Saccharomycetales

Họ: Saccharomycetaceae

Chi: Pichia.

Nguồn: K. Fugelsang, C. Edwards (2010)

Hình 1.8 Pichia anomala (wikipedia)

Đồ án tốt nghiệp

❖

Đặc điểm hình thái

Nấm men Pichia anomala có dạng hình elip dài, đầu tròn. Pichia manshurica

tế bào hình ovan. Chúng tồn tại ở dạng đơn lẻ, theo cặp hay nhóm nhỏ. Sinh sản vô

tính bằng cách nảy chồi, kích thước chồi từ 1,9-4,1 x 2,1-6,1 μm

- Pichia lên men đường glucose, sucrose, galactose, maltose.

- Ngoài ra, Pichia đồng hóa được cellobiose, trehalose, raffinose, xylose làm

nguồn carbon; đồng hóa biến nitrat, nitrit, ethylamine, lysine, cadaverine

thành nguồn nitơ.

- Pichia có khả năng phát triển trong khoảng nhiệt độ từ 13-37oC, pH từ

❖

3,5~7.

Ứng dụng trong lên men

Nấm men P.anomala đã được nghiên cứu sâu về sinh tổng hợp ethyl acetate,

kháng độc tố, phytase, khả năng kháng nấm và điều khiển sinh học trong quá trình

bảo quản ngũ cốc (Fredlund et at., 2002). Lipase từ chủng P.anomala hoạt động ở

pH 5,5 và 7,5 (Hou, 1994).

1.4.5 Một số nghiên cứu về cố định tế bào

Đồ án tốt nghiệp

1.4.5.1 Thế giới

Phương Chất Tế bào cố Năm Tác giả Tên đề tài Kết quả pháp mang định

Lên men ethanol Với cùng một tỷ lệ nguyên liệu (21g glucose), vi

bằng phương pháp khuẩn Zymomonas mobilis cố định sản xuất Zymomonas cố định tế bào vi 9,96g ethanol trong khi nấm men S.bayanus cố mobilis và G. Amin, H. Tạo gel Alginate khuẩn Zymomonas định chỉ sản xuất được 4,8g. Có thể kết luận rằng 1982 Saccharomyces Verachtert mobilis và Zymomonas có năng suất cao hơn nhiều trong bayanus Saccharomyces việc sản xuất ethanol so với các loại nấm men cổ

bayanus điển.

Phoowit Cố định tế bào nấm Bangrak, men sử dụng chất Saccharomyces Savitree Cố định tế bào Saccharomyces cerevisiae M30 2011 mang Alginate ứng cerevisiae M30 Limtong, Tạo gel Alginate để len men liên tục ethanol mang lại năng suất dụng lên men liên Muenduen etanol cao gấp 6-8 lần, có tính ổn định cao. tục để sản xuất Phisalaphong ethanol

Đồ án tốt nghiệp

Cố định của Zymomonas mobilis tế bào được cố định với Nhốt Nurhayati, Zymomonas Fe2O3 biến đổi polyvinyl alcohol (PVA) để thực bên Poly mobilis với rượu Chieh-Lun hiện quá trình lên men ethanol liên tục với hiệu trong Zymomonas 2016 Vinyl polyvinyl Fe2O3 tối Cheng, quả rất cao. Các thông số hoạt động quan trọng khung mobilis Alcohol ưu hóa quá trình như nồng độ glucose, tỷ lệ pha loãng, và các tế Dillirani mạng lên men ethanol bào hoạt động đã được tối ưu hóa để đạt được Nagarajan, xốp liên tục hiệu suất sản xuất ethanol sinh học cao với tốc độ Jo-Shu Chang

pha loãng cao và hiệu suất sử dụng glucose cao.

Nurhayati, Ch Nhốt Hiệu suất quá trình lên men của nấm men cố định Cồn lên men bởi ieh-Lun bên bởi bọt xốp PVA được xác định là cao hơn so với Poly men được cải tiến Cheng, Dillir trong Saccharomyces tế bào nấm men không cố định. Nấm men cố 2016 Vinyl bởi Cố định trong ani khung cerevisiae định sản xuất ethanol hơn khoảng 1,5 lần so với Alcohol bọt xốp Poly Nagarajan, mạng nấm men tự do. PVA đông khô có thể bảo vệ các (Vinyl Alcohol). Jo-Shu Chang xốp tế bào nấm men khỏi các phản ứng ức chế sau

khi ethanol sinh ra.

Đồ án tốt nghiệp

1.4.5.2 Việt Nam

Chất

Tên để tài

Tác giả

Tế bào cố định

Nội dung

mang

Kết quả cho thấy, quá trình lên men liên tục trong sản xuất cồn từ Nghiên cứu quá Nhóm nghiên

rỉ đường mía sử dụng tế bào nấm men cố định hoạt động tốt nhất ở tốc trình lên men liên cứu ở Đại học Saccharomyces độ pha loãng 0,154 l/l/giờ, với nồng độ rỉ đường 210 g/l. Lượng cồn tục bằng tế bào Bách khoa Hà Alginate cerevisiae thu được ổn định trong khoảng thời gian 40 ngày với nồng độ cồn duy cố định trong sản Nội và Viện CNTP 7028 trì trung bình 10,8 %. xuất cồn từ rỉ Công nghiệp

đường mía thực phẩm (nguồn: Hội nghị NC&PT các sản phẩm tự nhiên lần 3)

Mai Ngọc Dũng, Một số kết quả thu nhận trong thí nghiệm đã thể hiện được việc Sử dụng tế bào Đồng Thị Thanh chọn S.cerevisiae và phương pháp bẫy với hiệu suất cao và tính ổn nấm men cố định Thu định, hiệu suất cố định tế bào là 99,65%, hiệu suất lên men là 68,68%, trong quá trình Saccharomyces Alginate thời gian lưu trữ là 35 ngày đối với Alginate concentration (Alco) Trường đại học lên men alcohol cerevisiae 3,0% (tế bào nấm men được cố định trong dung dịch alginate 3% là tối khoa học tự từ rỉ đường mía ưu) được so sánh với tế bào tự do. Alco 3,0% được tái sử dụng 6 lần nhiên ĐHQG- (23/01/2008) trong suốt 18 ngày liên tục. HCM

Đồ án tốt nghiệp

CHƯƠNG 2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

2.1 Thời gian và địa điểm thực hiện đề tài

2.1.1 Thời gian nghiên cứu

Đề tài được tiến hành từ 09 tháng 05 năm 2016 đến ngày 10 tháng 8 năm

2016.

2.1.2 Địa điểm nghiên cứu

Địa điểm: Phòng thí nghiệm Nhiên liệu sinh học và Biomass – trường Đại

học Bách khoa TP HCM.

2.1.3 Đối tượng nghiên cứu

Các thí nghiệm được tiến hành trên vỏ cacao lấy ở hợp tác xã Tiền Giang.

Vỏ ca cao đã được phơi khô sau đó xay nhuyễn, sàng thu dạng bột và chứa

trong hộp nhựa PE, bảo quản ở nhiệt độ phòng, nơi thoáng mát.

Để đạt được mục tiêu đề tài, tiến hành nghiên cứu các nội dung sau:

2.1.4 Nội dung nghiên cứu

- Khảo sát chất mang PVA-alginate để cố định Saccharomyces cerevisiae và

Pichia anomala.

- Khảo sát các yếu tố chính ảnh hưởng đến quá trình lên men khi sử dụng chế

phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố định trên gel PVA để lên men.

- Thử nghiệm khả năng sử dụng chế phẩm Saccharomyces cerevisiae và

Pichia anomala cố định trên chất mang PVA để lên men thu bioethanol từ

vỏ cacao.

2.2 Vật liệu và thiết bị

2.2.1 Nguyên vật liệu dùng trong nghiên cứu

➢ Vỏ cacao: thu gom từ các vùng trồng cacao tại hợp tác xã Tiền Giang

Vỏ trái cacao vừa tách hạt được đem rửa sạch, phơi dưới ánh nắng mặt trời

trong 1 ngày, sau đó được cắt ra thành các mảnh nhỏ. Các mảnh nhỏ được sấy

trong tủ sấy ở nhiệt độ 70oC trong khoảng 3 ngày cho đến khối lượng không đổi.

Đồ án tốt nghiệp

Nguyên liệu sau khi sấy được xay nhuyễn thành bột, bảo quản trong hộp nhựa PE

đóng kín, để ở nhiệt độ phòng.

➢ Giống vi sinh vật được sử dụng

- Saccharomyces cerevisiae

- Pichia anomala

Chủng này đã được hoạt hóa và cấy truyền trên thạch nghiêng, bảo quản ở

400C và được cấy truyền hai tuần một lần để giữ giống.

➢ Cellulase

2.2.2 Hóa chất sử dụng

- Natri hydroxit (NaOH)

- Acid sulfuric (H2SO4 )

- Thuốc thử Dinitrosalicylic

- Thuốc thử Anthrone

- D-Glucose

- Peptone

- Agar

- Cồn 96% & 70%

- Acid boric ( H3BO3 )

- Canxi clorua (CaCl2)

- Alginate

- Polyvinyl alcohol (PVA)

➢ Dung dịch đệm (KH2PO4 & K2HPO4)

➢ Môi trường nhân giống hoạt hóa nấm men SBD (Saboiraud Dextrose Broth)

- D-glucose: 20g

- Pepton: 10g

- Nước cất: 1000mL

➢ Môi trường nuôi cấy nấm men SDA (Sabouraud Dextrose Agar)

D-glucose: 20g

Pepton: 10g

Đồ án tốt nghiệp

Agar: 20g

Nước cất: 1000 mL

➢ Thuốc thử DNS

Acid dinitrosalicylic (C7H4N2O7): 5g

Sodium hidroxide (NaOH): 8g

Potassium sodium tartrate tetrahydrate (C4H4O6KNa.4H2O): 150g

Nước cất: 500mL

➢ Thuốc thử Anthrone

Anthrone (C14H10O): 1g

Acid sulfuric (H2SO4) 98%: 500m

➢ Dung dịch đệm (pH=5)

Kali dihydrophotphat (KH2PO4) 1M

Dipotassium phosphate (K2HPO4) 1M

2.2.3 Thiết bị và dụng cụ

➢ Dụng cụ:

Becher: 1000mL, 500mL, 250mL, 100mL

Erlen: 250mL, 100mL

Bình định mức: 1000mL, 500mL, 250mL, 100mL, 50mL

Ống nghiệm

Bình lên men 100mL, 50mL

Ống đong: 250mL, 25mL

Pipet vạch: 25mL, 10mL, 5mL, 1mL

Micropipet: 1000µL, 100µL

Cuvet

Ống nhỏ giọt thủy tinh

Đũa thủy tinh. Phễu nhựa.

➢ Thiết bị:

Đồ án tốt nghiệp

Bảng 2.1 Thông tin thiết bị sử dụng trong quá trình nguyên cứu

Hãng sản xuất Model Tên thiết bị

Ohanus PA84 Cân kỹ thuật

Stuart SI500 Máy lắc ổn nhiệt

Tomy Nồi hấp tiệt trùng (Autoclave) ES-215

Sharp SJ-F75PV-SL Tủ lạnh

Hitachi CT 4D Máy ly tâm

MCV-710AIS Sanyo Biomedical Tủ cấy

Glassco Micropipet

Sinosource HY-5A Máy lắc

PortableRefractometer RF16 Cồn kế

pH kế

Aligent Technologies Thiết bị đo quang phổ hấp thu Cary 60

Tủ sấy

2.3 Phương pháp nghiên cứu

Theo nội dung của đề tài các thí nghiệm được bố trí trong sơ đồ

2.3.1 Sơ đồ bố trí thí nghiệm

Đồ án tốt nghiệp

Giống

Bột vỏ cacao khô

Saccharomyces cerevisiae Pichia anomala

Tiền xử lý

Nhân giống & Giữ giống

Khảo sát pH, thời gian và tỷ lệ tế bào cố định để lên men

Lên men

Cố định tế bào

Khảo sát nồng độ PVA và acid boric

Khảo sát khả năng tái sử dụng

Hình 2.1 Sơ đồ bố trí thí nghiệm

2.3.2 Phương pháp bố trí thí nghiệm

2.3.2.1 Khảo sát nồng độ PVA và H3BO3 để cố định tế bào S.cerevisiae và

P.anomala Để tăng khả năng tạo hạt, tiến hành bổ sung aliginate cùng tạo hạt với chất -

mang PVA và CaCl2 được bổ sung vào H3BO3.

- Tiến hành khảo sát nồng độ alginate (1%, 2%, 3%, 4%): giữ chất mang PVA

nồng độ 12%, tạo hạt trên dung dịch H3BO3 7% và CaCl2 2%.

- Tiến hành khảo sát khả năng cố định tế bào nấm men ở nồng độ PVA (10%,

11%, 12%, 13%, 14%) và H3BO3 (5%, 6%, 7%, 8%, 9%) khác nhau.

- Trước khi cố định: kiểm tra mật độ tế bào trong dịch nấm men ban đầu (môi

trường SDB)

- Sau khi cố định: kiểm tra mật độ tế bào không được cố định và kiểm tra mật

độ tế bào sống trong hạt cố định bởi chất mang PVA và H3BO3.

- Các nghiệm thức khảo sát khả năng cố định tế bào nấm men ở các nồng độ

PVA và alginate.

Đồ án tốt nghiệp

Bảng 2.2 Các nghiệm thức khảo sát khả năng cố định tế bào của S.cerevisiae

PVA 10% 11% 12% 13% 14% H3BO3

5% NT1 NT2 NT3 NT4 NT5

6% NT6 NT7 NT8 NT9 NT10

7% NT11 NT12 NT13 NT14 NT15

8% NT16 NT17 NT18 NT19 NT20

9% NT21 NT22 NT23 NT24 NT25

Bảng 2.3 Các nghiệm thức khảo sát khả năng cố định tế bào của Pichia anomala

PVA 10% 11% 12% 13% 14% H3BO3

5% NT26 NT27 NT28 NT29 NT30

6% NT31 NT32 NT33 NT34 NT35

7% NT36 NT37 NT38 NT39 NT40

8% NT41 NT42 NT43 NT44 NT45

9% NT46 NT47 NT48 NT49 NT50

2.3.2.2 Khảo sát các yếu tố chính ảnh hưởng đến quá trình lên men khi sử

Nguyên liệu được tiền xử lý bằng phương pháp thủy nhiệt theo tỷ lệ (bột vỏ

dụng chế phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố định trên gel PVA để lên men từ vỏ cacao.

cacao và nước cất) là (1:20), đun trong 2 giờ. Nguyên liệu sau khi tiền xử lý sẽ

được điều chỉnh pH, hấp khử trùng (121oC, 10atm, 10 phút) để tiêu diệt vi sinh vật

tránh gây nhiễm trong quá trình lên men. Cuối cùng bổ sung enzyme cellulase,

Đồ án tốt nghiệp

pepton và nấm men S.cerevisiae và P.anomala tiến hành thủy phân và lên men

đồng thời. Sau lên men thu dịch lên men có chứa cồn.

Tiến hành khảo sát các yếu tố ảnh hưởng đến quá trình lên men ở nhiệt độ

phòng (25oC – 35oC), trong điều kiện tĩnh, tế bào nấm men cố định bởi hạt có nồng

độ PVA 12%, alginate 1%, dung dịch acid boric (H3BO3) 7% và CaCl2 2%; tỷ lệ

nấm men cố định 5%.

Đề tài khảo sát các yếu tố ảnh hưởng đến quá trình thủy phân và lên men

đồng thời được trình bày tóm tắt trong bảng 3.3

Bảng 2.4 Bố trí các nghiệm thức thí nghiệm

Nghiệm thức Thời gian (giờ) pH Tỷ lệ nấm men

1 42

2 45

3 48 5 5% 4 51

5 54

6 56

7 4,5

8 Thời gian tối ưu 5 5%

9 5,5

10 3%

11 5% Thời gian tối ưu pH tối ưu 12 7%

13 9%

Đồ án tốt nghiệp

Sau khi thủy phân và lên men các chỉ tiêu cần theo dõi: nồng độ cồn (%), hàm

lượng đường khử (mg/ml), hàm lượng cellulose (mg/ml).

Mỗi nghiệm thức lặp lại 3 lần, kết quả được tính bằng trung bình của 3 lần đo.

Tiến hành khảo sát khả năng tái sử dụng trong thời gian lên men tối ưu.

2.3.2.3 Khảo sát khả năng tái sử dụng chế phẩm S.cerevisiae và P.anomala cố định trên gel PVA để lên men từ vỏ cacao.

Nguyên liệu sau khi tiền xử lý sẽ được điều chỉnh pH, hấp khử trùng (121oC,

10atm, 10 phút) để tiêu diệt vi sinh vật tránh gây nhiễm trong quá trình lên men.

Cuối cùng bổ sung enzyme cellulose, peptone và nấm men Saccharomyces

cerevisiae và Pichia anomala tiến hành thủy phân và lên men đồng thời. Sau mỗi

lần lên men ở thời gian tối ưu, thu dịch lên men và sử dụng hạt cố định ở lần lên

men trước, thay thành phần nguyên liệu mới bột vỏ cacao đã qua tiền xử lý bổ sung

enzyme cellulose và peptone tiếp tục tiến hành lên men ở thời gian tối ưu.

Xác định khả năng tái sử dụng.

Sau mỗi lần lên men thu dịch men đo các chỉ tiêu cần theo dõi: nồng độ cồn

(%), hàm lượng đường khử (mg/ml), hàm lượng cellulose (mg/ml).

2.4 Phương pháp phân tích

2.4.1 Phương pháp Vi sinh

2.4.1.1 Phương pháp giữ giống nấm men

Chuẩn bị môi trường SDA có chứa agar. Tiệt trùng, rót dung dịch vào ống

nghiệm và để yên đến khi agar đông lại. Tiến hành cấy giống nấm men từ ống

nghiệm gốc sang ống môi trường thạch nghiêng đã chuẩn bị sẵn từ trước. Công

việc này tiến hành trong tủ cấy vi sinh để tránh bị nhiễm các vi sinh vật khác có

ảnh hưởng xấu đến men giống và quá trình lên men sau này.

2.4.1.2 Phương pháp nhân giống và hoạt hóa giống nấm men

Giống nấm men cần được nhân giống nhằm tăng sinh khối, tăng hoạt lực

giống trước khi đưa vào lên men. Ở đề tài này tiến hành nhân giống qua hai giai

đoạn:

Đồ án tốt nghiệp

Giai đoạn 1: Nấm men sau khi được tăng sinh trên môi trường thạch nghiêng

SDA. Khuẩn lạc được cấy ria sang môi trường thạch đĩa. Chọn những khuẩn lạc

riêng rẽ thuần cấy vào ống nghiệm chứa 10mL môi trường SDB. Nuôi ở 37oC trong

48 giờ.

Giai đoạn 2: Cho toàn bộ nấm men đã nuôi giống ở giai đoạn 1 vào erlen có

chứa 200mL môi trường SDB vô trùng, nuôi ở 37oC trong 48 giờ.

Cần hoạt hóa giống nấm men trước 8-24 giờ trong môi trường mới để nấm

men phát triển sinh khối và có hoạt lực trở lại trước khi lên men cho đợt tiếp theo.

2.4.1.3 Định lượng số tế bào bằng phương pháp đếm khuẩn lạc

❖ Nguyên tắc: Phương pháp xác định gián tiếp số lượng tế bào bằng cách đếm

số lượng khuẩn lạc mọc trên môi trường thạch, qua đó xác định được số tế

bào sống.

❖ Mục đích: Để xác định số lượng vi sinh vật không được cố định. Lấy mẫu

sau khi cố định hạt ở trong dung dịch tạo hạt còn dư.

❖ Tiến hành:

- Pha loãng mẫu: pha loãng mẫu theo các dãy số thập phân thích hợp như :

10-1, 10-2.

- Cấy mẫu: Dùng micropipette hút 0,1mL dịch mẫu đã pha loãng cho vào mỗi

đĩa thạch. Khi tất cả các thể tích 0,1mL dịch mẫu ở các độ pha loãng khác nhau đều

đã được chuyển lên bề m t thạch của đĩa Petri, sử dụng que cấy gạt bằng thủy tinh

để dàn đều các tế bào trên bề mặt thạch. Ủ ở nhiệt độ phòng.

- Kết thúc thời gian ủ, lấy các đĩa thạch ra, tiến hành đếm tất cả khuẩn lạc

xuất hiện trên đĩa sau khi ủ. Chọn các đĩa có số khuẩn lạc đếm được từ 25-250 để

𝑁

tính toán. Mật độ tổng của nấm men được tính theo công thức :

𝑁1 ×𝑉 ×𝑓1 +⋯𝑁2 ×𝑉 ×𝑓2

A = (cfu/mL)

Trong đó: A: số tế bào (cfu) nấm men trong 1ml mẫu.

N: tổng số khuẩn lạc đếm được trên các đĩa đã chọn.

ni: số lượng đĩa cấy tại độ pha loãng thứ i.

Đồ án tốt nghiệp

V: thể tích dịch mẫu (ml) cấy vào trong mỗi đĩa

fi: độ pha loãng tương ứng.

Làm tròn kết quả có được, ghi lại 2 số có nghĩa và biểu thị kết quả dưới dạng

thập phân giữa 1,0 và 9,9 nhân với 10n (n là số m ).

❖ Lưu ý:

- Nếu ở độ pha loãng cao nhất trong dãy các ống nghiệm nói trên, số khuẩn

lạc đếm được trên 1 đĩa > 250 thì kết quả ghi là > 2,5.107 cfu/mL.

- Nếu độ pha loãng thấp nhất trong dãy các ống nghiệm nói trên, số khuẩn lạc

đếm được trên 1 đĩa < 25, kết quả ghi là < 2,5.103 cfu/mL.

2.4.1.4 Phương pháp đếm khuẩn lạc

❖ Nguyên tắc: Xác định số tế bào sống gián tiếp bằng cách đếm khuẩn lạc

trên môi trường thạch đĩa.

dịch sau khi phá hạt.

❖ Mục đích: Để xác định số lượng vi sinh vật được cố định. Lấy mẫu ở trong dung

❖ Cách tiến hành:

• Chuẩn bị chất mang PVA-alginate, dung dịch tạo hạt CaCl2-H3BO3 và

dung dịch đệm (K2HPO4 và KH2PO4) hấp khử trùng

• Chuẩn bị 200mL SDB đã hấp vô trùng, 1 đĩa thạch SDA và 1 erlen chứa

10mL SDB vô trùng

• Cấy ria giống từ ống thạch nghiêng sang đĩa SDA, ủ ở 37oC trong 24 giờ

• Lấy 1 khuẩn lạc riêng lẻ cho vào erlen chứa 10mL SDB, ủ ở 37oC trong

48 giờ

• Chuyển 10mL môi trường này vào chai chứa 200mL SDB để nấm men

tiếp tục phát triển tăng sinh khối, ủ 37oC trong 48 giờ (cho đến khi môi

trường đục). Thu sinh khối.

• Tạo hạt alginate có chứa nấm men, để tủ lạnh trong 2 tiếng để nấm men

cố định bền chắc cấu trúc

• Gạn phần dung dịch tạo hạt ban đầu, cho dung dich đệm phá vỡ cấu trúc

alginate vào hạt vừa tạo. Hỗn hợp để máy lắc trong 24 giờ

Đồ án tốt nghiệp

• Pha loãng mẫu ở các nồng độ thập phân khác nhau:10-1, 10-2...để cấy

mẫu.

• Hút 0,1mL mẫu đã pha loãng cho vào đĩa thạch có chứa môi trường

SDA, dùng que trải tam giác thủy tinh trải đều dịch vi sinh trên bề mặt

môi trường.

Ủ 37oC trong 48 giờ. Sau khi ủ, lấy đĩa thạch ra và tiến hành đếm.

2.4.2 Phương pháp sinh hóa

2.4.2.1 Định lượng đường khử bằng phương pháp Miller

❖ Nguyên tắc:

Phương pháp này dựa trên phản ứng tạo màu giữa đường khử với thuốc thử

3,5-dinitrosalycylic acid (DNS). DNS có màu vàng trong dung dịch kiềm sẽ bị khử

thành acid 3-amino-nitrosalycylic có màu đỏ cam.

Cường độ màu của hỗn hợp phản ứng tỉ lệ thuận với nồng độ đường khử

trong một phạm vi nhất định được đo bằng máy quang phổ so màu.

Dựa theo đồ thị đường chuẩn glucose tinh khiết với thuốc thử, ta sẽ tính

được hàm lượng đường khử của mẫu nghiên cứu. Hợp chất tạo thành có độ hấp thu

mạnh nhất trong khoảng bước sóng 540-600nm.

❖ Cách tiến hành:

• Hút 1ml dung dịch mẫu (đã pha loãng đến nồng độ thích hợp) + 1ml

dung dịch DNS.

• Nung cách thủy hỗn hợp trong 15-20 phút. Làm lạnh nhanh về nhiệt

độ phòng rồi đo OD ở bước sóng 540nm.

• Từ giá trị OD thu được, dựa vào đồ thị đường chuẩn glucose suy ra

𝑚

hàm lượng đường khử trong mẫu. Tính toán kết quả theo công thức: D = 𝑋 × 𝑛 ×𝑉 (mg/g)

Trong đó:

X (mg/mL) đường khử trong dung dịch đường pha loãng

n: hệ số pha loãng

Đồ án tốt nghiệp

V: Thể tích dịch đường gốc (mL)

m: Khối lượng mẫu cân (g)

2.4.2.2 Định lượng cellulose theo phương pháp Kiursher – Hofft

❖ Nguyên tắc:

Dựa vào phản ứng tạo màu giữa cellulose với thuốc thử Anthrone (9,10-

dihydro-9-oxoantracen) trong acid H2SO4 đậm đặc để xác định hàm lượng cellulose

trong mẫu.

Cường độ màu của hỗn hợp phản ứng tỉ lệ thuận với nồng độ đường khử

trong một phạm vi nhất định được đo bằng máy quang phổ so màu.

Dựa theo đồ thị chuẩn cellulose tinh khiết với thuốc thử, ta sẽ tính được hàm

lượng cellulose của mẫu nghiên cứu. Hợp chất tạo thành có độ hấp thu mạnh nhất ở

bước sóng 630nm.

❖ Cách tiến hành:

• Hút 0,5ml dung dịch (đã pha loãng đến nồng độ thích hợp) + 5ml

dung dịch Anthrone.

• Nung cách thủy hỗn hợp trong 5 phút. Làm lạnh nhanh rồi đo OD ở

bước song 540nm.

• Từ giá trị OD thu được, dựa vào đồ thị đường chuẩn cellulose suy

ra hàm lượng celulose trong mẫu.

2.4.2.3 Phương pháp xác định pH

Dùng pH kế.

2.4.2.4 Phương pháp xác định độ cồn

Dùng cồn kế: Đơn vị % v/v.

Số liệu thu được ở các thí nghiệm là số liệu thô. Sau đó sẽ được xử lý thống

2.4.3 Xử lý số liệu

kê bằng ANOVA một yếu tố.

Đồ án tốt nghiệp

CHƯƠNG 3. KẾT QUẢ VÀ BÀN LUẬN

3.1 Quá trình cố định tế bào

3.1.1 Cảm quan nồng độ sodium alginate

Trạng thái chế phẩm cố Hình ảnh Nồng độ sodium

định alginate (%)

Hạt mềm, một số hạt bị 0,5

vỡ ngay khi vừa nhỏ vào

dung dich tạo hạt

Hạt chắc, tròn đều đẹp 1

Hạt chắc, hạt dai nhưng 2

không tròn mà có đuôi

3 Hạt dẻo, hạt dai, một số

hạt bị dính vào nhau

thành chùm

Đồ án tốt nghiệp

Tiến hành tạo giá thể hạt: tạo dung dịch keo có thành phần PVA 12%,

alginate ở các nồng độ khác nhau 0.5%, 1%, 2%, 3%; cố định thành hạt bằng cách

nhỏ giọt vào dung dịch cố định có thành phần acid boric (H3BO3) 7% và CaCl2 2%.

Kết quả: Trong quá trình tạo hạt cố định tế bào, sodium alginate được bổ sung

vào dung dịch để cải thiện tính chất hạt PVA-acid boric bằng cách giảm sự kết tụ

và để tăng cường tính chất bề mặt của các hạt. Do đó nồng độ alginate có ảnh

hưởng đến hạt PVA-acid boric cố định. Nồng độ alginate thấp hạt không chắc khi

cố định tế bào sẽ, nồng độ quá cao thì hạt cứng, cấu trúc quá chặt chẽ tế bào làm

giảm khả năng bắt chất dinh dưỡng môi trường. Nồng độ alginate cao thì hạt được

tạo cũng sẽ có cấu trúc quá chặt chẽ sẽ ảnh hưởng đến việc trao đổi chất của nấm

men cố định với môi trường. Nên nồng độ tốt để hạt gel có cấu trúc ổn định, tế bào

được cố định vẫn có thể trao đổi chất tốt là alginate 1% để kết hợp với các chất

mang và dung dich tạo hạt gel khác.

3.1.2 Ảnh hưởng của nồng độ PVA

PVA có tính đàn hồi và bền cơ học cao, khả năng cố định tế bào tốt. Chất

mang PVA có cấu trúc lỗ xốp đặc trưng. Nhờ có cấu trúc đặc biệt mà PVA trở

thành chất mang hữu hiệu để cố định tế bào vi sinh vật mà không làm cản trở đến

quá trình sinh trưởng và phát triển của các tế bào vi sinh vật được cố định bên

trong.

Cố định lạnh đông hình thành gel với hệ thống các lỗ xốp làm cho cơ chất và

sản phẩm phản ứng có thể thấm qua chất mang rất dễ dàng. Tuy nhiên cố định tế

bào vi sinh vật trong điều kiện nhiệt độ thấp cũng ảnh hưởng ít nhiều đến hoạt tính

vi sinh vật.

Kết quả khảo sát mật độ tế bào được cố định trên chất mang PVA – alginate.

Đồ án tốt nghiệp

Mật độ của S.cerevisia trong bình nhân giống: 107,5 cfu/ml

❖ Saccharomyces cerevisia

l

/

PVA 10%

PVA 11%

PVA 12%

PVA 13%

m u f c g o l o à b ế t ộ đ t ậ M

PVA 14%

8 7 6 Nồng độ acid boric (%)

120

100

PVA 10%

Hình 3.1. Mật độ tế bào cố định trên PVA

)

PVA 11%

%

PVA 12%

PVA 13%

( t ấ u s u ệ i H

PVA 14%

Nồng độ acid boric (%)

Hình 3.2. Hiệu suất cố định tế bào (%)

Đồ án tốt nghiệp

Mật độ của P.anomala trong bình nhân giống: 108,5 cfu/ml

❖ Pichia anomala

l

/

PVA 10%

PVA 11%

PVA 12%

PVA 13%

m u f c g o l o à b ế t ộ đ t ậ M

PVA 14%

8 7 6 Nồng độ acid boric (%)

35.0

30.0

25.0

Hình 3.3. Mật độ tế bào cố định trên PVA

)

%

PVA 10%

20.0

PVA 11%

15.0

PVA 12%

( t ấ u s u ệ i H

10.0

PVA 13%

PVA 14%

5.0

0.0

7 Nồng độ acid boric (%)

Hình 3.4. Hiệu suất cố định tế bào (%)

❖ Nhận xét:

Polyvinyl alcohol (PVA) sẽ cố định tế bào bằng cách tạo cryogel. Acid boric

(H3BO3) là dung dịch hỗ trợ tạo hạt PVA, nồng độ acid boric phụ thuộc vào tỷ lệ

phần trăm của PVA được sử dụng. Việc cố định tế bào phụ thuộc vào việc tạo hạt

Đồ án tốt nghiệp

gel, phụ thuộc vào nồng độ PVA và acid boric, nếu nồng độ PVA và acid boric

càng tăng thì khả năng tạo hạt gel tăng, mật độ tế bào được cố định càng cao nhờ

hạt gel PVA khó bị vỡ, có tính đàn hồi càng cao.

Nồng độ PVA 12% và acid boric 7% có hiệu suất cố định tế bào nấm men

Saccharomyces cerevisia đạt 98%; nồng độ PVA 12% và acid boric 5%, nồng độ

PVA 13% và acid boric 7% có hiệu suất cố định tế bào nấm men Saccharomyces

cerevisia đạt 94%; nồng độ PVA 13% và acid boric 5% có hiệu suất cố định tế bào

nấm men Saccharomyces cerevisia đạt 94%.

Nồng độ PVA 10% và acid boric 5% có hiệu suất cố định tế bào nấm men

Pichia anomala 10,1%; nồng độ PVA 12% và acid boric 7% có hiệu suất cố định tế

bào nấm men Pichia anomala 28,8%; nồng độ PVA 13% và acid boric 9% có hiệu

suất cố định tế bào nấm men Pichia anomala 25,3%;

Có thể thấy rằng nồng độ PVA càng cao thì hiệu suất cố định tế bào càng tăng.

Do nồng độ PVA càng cao thì hạt càng chặt các lỗ xốp càng nhỏ tế bào trôi ra càng

ít. Chất mang PVA có các đặc tính cơ lý và khả năng chịu đựng tốt hơn, tuy nhiên

nồng độ cồn sản phẩm thấp và hiệu suất lên men không cao.

Từ những kết quả trên ta có nồng độ PVA 12% và acid boric 7% cho hiệu suất

cố định lớn nhất ở cả hai loại tế bào nấm men Saccharomyces cerevisia đạt 98%,

Pichia anomala 28,8%. Đây là nồng độ PVA và acid boric thích hợp để cố định tế

bào.

3.2 Kết quả sử dụng chế phẩm S.cerevisia và P.anomala cố định trên

PVA để lên men thu bioethanol từ vỏ cacao

3.2.1 Ảnh hưởng của thời gian (giờ) lên men

Thời gian là yếu tố quan trọng ảnh huởng đến chất lượng của sản phẩm.

Thời gian lên men phụ thuộc vào nhiều yếu tố như nhiệt độ lên men, nồng độ

đường, nồng độ cellulose, chủng nấm men…Thời gian lên men được tính bắt đầu

từ khi cấy chủng nấm men vào môi trường lên men, nhưng thời gian kết thúc thì

tùy thuộc vào từng môi trường lên men cụ thể và tùy thuộc vào mục đích lên men

để dừng quá trình lên men. Nếu thời gian lên men quá ngưỡng, quá trình lên men

Đồ án tốt nghiệp

chưa xảy ra hoàn toàn, đường sót sẽ còn nhiều trong dịch lên men và độ cồn tạo ra

thấp. Nếu thời gian lên men quá dài, môi trường lên men sẽ dễ bị nhiễm các loại vi

sinh vật không mong muốn, đồng thời nếu có sự hiện diện của oxy thì cồn sẽ bị oxy

hóa thành acid acetic, làm giảm độ cồn.

Trong giai đoạn bắt đầu từ khi cho tế bào nấm men đã được cố định vào lên

men để chuyển hóa đường thành ethanol, nấm men phải được phát triển trong điều

kiện yếm khí hoàn toàn. Vì trong môi truờng này, sự hô hấp của nấm men bị ức chế

và bắt đầu phải tìm năng luợng cần thiết bằng con đường lên men Ðể đáp ứng năng

lượng cần thiết thì nấm men cần phân hủy một lượng đường lớn và đường sẽ

chuyển hóa thành ethanol và CO2. Ðó là nguyên nhân muốn có ethanol nhiều thì

không được có oxy trong môi trường lên men. Nếu có oxy thì trong giai đoạn này

ethanol sẽ tiếp tục chuyển hóa thành acid acetic làm giảm hoạt tính của tế bào được

cố định và giảm nồng độ cồn sinh ra dẫn đến hiệu suất không tốt.

Giống nấm men sau khi nhân giống đạt đủ sinh khối sẽ được cố định cho

vào môi trường lên men bioethanol. Trước khi giống này được sử dụng cho đợt sau

lên men thì cần hoạt hóa 8 – 24 giờ trong môi trường mới để nấm men phát triển

sinh khối và có hoạt lực trở lại. Quá trình lên men xảy ra nhanh trong khoảng thời

gian từ 24 giờ đến 48 giờ, nấm men đi vào pha thích nghi với môi trường, số lượng

tế bào nấm men cũng tăng nhanh đáng kể. Nấm men hấp thụ đường dinh dưỡng

được chuyển hóa phần lớn ở giai đoạn này.

Do đó, việc chọn thời gian lên men phù hợp có ý nghĩa rất quan trọng, chọn

thời gian lên men sao cho có lợi nhất.

Đề tài tiến hành khảo sát ảnh hưởng của thời gian tới quá trình lên men ở

các mốc thời gian 42, 45, 48, 51, 54, 56 giờ.

Kết quả khảo sát một số thành phần trong thời gian lên men được trình bày

trong hình.

Đồ án tốt nghiệp

2.50

2.00

)

%

1.50

( n ồ c

1.00

ộ đ g n ồ N

0.50

0.00

Thời gian (giờ)

Độ cồn

a. Biến đổi nồng độ cồn theo thời gian lên men.

H p

5.65 5.6 5.55 5.5 5.45 5.4 5.35 5.3 5.25 5.2 5.15

Thời gian (giờ)

9.00

8.00

7.00

b. Biến đổi pH theo thời gian lên men.

) l

6.00

m / g m

(

5.00

g n ợ ư

4.00

l

3.00

m à H

2.00

1.00

0.00

Thời gian (giờ)

42 Glucose

c. Biến đổi hàm lượng đường khử và hàm lượng

cellulose theo thời gian lên men.

Đồ án tốt nghiệp

120.0

100.0

)

80.0

%

60.0

( t ấ u s u ệ i H

40.0

20.0

0.0

51 48 Thời gian (giờ)

Glucose

Cellulose

d. Ảnh hưởng của thời gian lên men tới hiệu

suất lên men ethanol.

❖ Nhận xét:

Hình 3.5 Sự thay đổi các thành phần theo thời gian lên men

Qua biểu đồ hình 3.5 cho thấy:

Quá trình lên men xảy ra nhanh trong khoảng từ 42 đến 56 giờ, nấm men đi

vào pha ổn định thích nghi với môi trường. Nấm men hấp thụ đường và chất dinh

dưỡng hòa tan khác để lên men tạo thành cồn. Đường và chất dinh dưỡng được

chuyển hóa phân lớn ở giai đoạn này, độ cồn tăng đều từ 42 giờ đến 54 giờ nhưng

không có sự chênh lệch nhiều (từ 1,77% ± 0,15 đến 1,9% ± 0,1) từ 42 giờ đến 56

giờ nồng độ cồn cao nhất ở 54 giờ là 1,9% ± 0,1. Hàm lượng đường khử tăng do

nấm men cố định đã tăng sinh khối và sử dụng đường dẫn đến độ cồn tăng và hàm

lượng đường khử cũng tăng, phản ứng tạo thành ethanol cũng diễn ra nhanh. Hàm

lượng đường khử tăng từ (6,37 ± 0,1 mg/ml) tăng lên (8,31 ± 0,1 mg/ml) Đồng thời

hàm lượng cellulose cũng giảm mạnh từ (7,74 ± 0,2 mg/ml) xuống còn (2,84 ±

0,1mg/ml) do hoạt lực enzyme cho vào còn mạnh nên dễ dàng phân cắt cellulose

thành đường tăng còn hàm lượng đường tăng còn hàm lượng cellulose thì giảm.

(Bảng 1 – PLB).

Đồ án tốt nghiệp

Từ khoảng 54 đến 56 nồng độ cồn bắt đầu giảm. Vì trong thời gian dài thì

ethanol dễ bị oxy hóa thành acid acetic làm giảm độ cồn và làm giảm pH của dịch

lên men.

Từ những kết quả trên có thể kết luận 54 giờ là thời gian tối ưu để tế bào

nấm men cố định trong hạt gel PVA thủy phân và lên men đồng thời vỏ ca cao thu

bioethanol và tiến hành lấy 54 giờ là thời gian tối ưu cho các thí nghiệm tiếp theo.

1.20

1.00

3.2.2 Ảnh hưởng của pH

)

%

0.80

0.60

0.40

( n ồ c ộ đ g n ồ N

0.20

0.00

4.5

5.5

5 pH

Độ cồn

7.0

6.0

a. Biến đổi nồng độ cồn theo pH trong môi trường lên men.

) l

5.0

m / g m

4.0

3.0

( g n ợ ư

l

2.0

m à H

1.0

0.0

5.5

4.5

Glucose

5 pH

b. Biến đổi hàm lượng đường khử và hàm lượng

cellulose theo pH trong môi trường lên men.

Đồ án tốt nghiệp

100.0

98.0

96.0

)

94.0

%

92.0

90.0

i

( t ấ u s u ệ H

88.0

86.0

84.0

82.0

4.5

5.0

5.5

pH

Glucose

c. Ảnh hưởng của pH tới hiệu suất lên men ethanol.

Hình 3.6 Sự thay đổi các thành phần theo pH trong môi trường lên men

Độ pH hay nồng độ ion H+ ảnh hưởng đến sản phẩm lên men. Do đó, pH của

môi trường lên men sẽ ảnh hưởng trực tiếp đến kết quả lên men. Đề tài tiến hành

lên men với pH môi trường ban đầu ngay khi trung hòa. Kết quả khảo sát pH được

thể hiện qua hình 3.6

❖ Nhân xét:

Khi lên men môi trường có pH 5,5 thì thu được dịch có độ cồn cao nhất là

9,7% ± 0,12. (hình 4.6a).

Nồng độ cồn tăng khi pH 4,5 (0,77 % ± 0,06), pH 5 (0,93% ± 0,06), pH 5,5

(0,97% ± 0,12) (Hình 4.6a). Do việc làm giảm ion H+ trong môi trường tạo thuận

lợi cho sự chuyển hóa đường thành rượu của nấm men Môi trường ban đầu là pH

4,5 cho độ cồn sau lên men là thấp nhất (0,77% ± 0,06) vì nếu pH quá thấp sẽ ức

chế tế bào nấm men, sinh khối không cao dẫn đến nồng độ cồn cũng không cao

(Bảng 2 - PLC).

Môi trường lên men pH 5,5 (nồng độ cồn 0,97%) thu được nồng độ cồn cao

nhất. Hàm lượng đường khử thấp nhất là 2,5 ± 0,3 mg/ml, hàm lượng cellulose cao

(6,2 ± 0,2 mg/ml. Hàm lượng cellulose vẫn còn cao, nhưng nồng độ đường giảm,

Đồ án tốt nghiệp

điều đó chứng tỏ ở pH nấm men đang sử dụng nhiều đường lên men ethanol. Ở pH

5,5 nấm men đang hoạt động tối ưu (Bảng 2-PLC).

Môi trường có pH 4,5 khi lên men thì có hàm lượng cellulose (5,9 ± 0,1

mg/ml) và hàm lượng đường khử vẫn còn cao 4,1 ± 0,4 mg/ml.Qua đó có thể thấy

ở pH này nấm men không có được hoạt động tối ưu, sử dụng rất ít đường để lên

men tạo ethanol.

Tại pH 5 thì cho thấy nấm men cố định đang hoạt động ở mức trung bình.

Hàm lượng cellulose còn lại sau lên men (3,6 ± 0,3 mg/ml) thấp hơn so với 2 mức

pH còn lại, nhưng hàm lượng đường ở pH này vẫn còn cao vì nấm men cố định

chưa sử dụng phần đường được phân giải từ cellulose.

Như vậy pH bằng 5,5 tối ưu cho quá trình lên men cố định tế bào thu ethanol

từ vỏ cacao.

3.2.3 Ảnh hưởng của tỷ lệ nấm men

Nấm men là nhân tố tạo ra quá trình lên men, chuyển hóa đường thành

ethanol. Quá trình sinh trưởng của nấm men phụ thuộc rất nhiều vào điều kiện môi

trường quanh nó. Khi cố định tế bào, do sự tương tác giữa tế bào với chất mang và

giữa tế bào với nhau mà khả năng sinh trưởng và hình thái của tế bào cũng có một

vài biến đổi.

Trong đề tài này cố định 2 chủng nấm men Saccharomyces cerevisiae và

Pichia anomala để lên men thu bioethanol và việc bổ sung tỷ lệ giống lên men là

3%, 5% 7%,9%. Do dó ta tiến hành khảo sát tìm ra tỷ lệ bổ sung tế bào 2 chủng

nấm men cố định bởi chất mang PVA để nâng cao hiệu quả lên men. Kết quả khảo

sát tỷ lệ nấm men cố định được trình bày.

Đồ án tốt nghiệp

1.2

)

%

0.8

0.6

0.4

( n ồ c ộ đ g n ồ N

0.2

Độ cồn

Tỷ lệ tế bào cố định (%)

a. Biến đổi nồng độ cồn theo tỷ lệ tế bào cố định bổ sung

5.5

5.4

5.3

5.2

5.1

vào môi trường lên men.

H p

4.9

4.8

4.7

4.6

Tỷ lệ tế bào cố định (%)

b. Biến đổi nồng pH theo tỷ lệ tế bào cố định bổ sung vào

môi trường lên men.

Đồ án tốt nghiệp

25.0

20.0

) l

15.0

m / g m

( g n ợ ư

l

10.0

m à H

5.0

0.0

glucose

3 cellulose

Tỷ lệ tế bào cố định (%)

c. Biến đổi nồng hàm lượng đường khử và hàm lượng

cellulose theo tỷ lệ tế bào cố định bổ sung vào môi trường lên .

men a

)

%

( t ấ u s u ệ i H

100.0 98.0 96.0 94.0 92.0 90.0 88.0 86.0 84.0 82.0 80.0 78.0

glucose

3 cellulose

Tỷ lệ tế bào cố định (%)

d. Ảnh hưởng của tỷ lệ tế bào cố định bổ sung vào môi

Hình 3.7 Sự thay đổi các thành phần theo tỷ lệ nấm men cố định

trường lên men tới hiệu suất lên men ethanol.

trong môi trường lên men

Đồ án tốt nghiệp

❖ Nhận xét:

Tỷ lệ nấm men cố định đóng vai trò quan trọng trong quá trình lên men

bioethanol. Qua đồ thị ta thấy được tỷ lệ nấm men cố định ảnh hưởng đến hiệu suất lên

men và nồng độ ethanol sản phẩm.

Tỷ lệ nấm men cố định bổ sung vào môi trường lên men là 3% có độ cồn lớn

nhất 1% so với độ cồn của tỷ lệ nấm men cố định bổ sung vào môi trường lên men 7%

là 0,97% thì không chênh lệch không nhiều. Hàm lượng đường khử ở tỷ lệ nấm men cố

định 3% (2,6 ± 0,06 mg/ml) cao hơn so với hàm lượng đường khử ở tỷ lệ nấm men cố

định 7 % (4,6 ± 0,26 mg/ml).

Độ cồn của tỷ lệ nấm men cố định bổ sung vào môi trường lên men là 9% (0,9%

± 0,06) tuy có độ cồn chênh lệch không cao so với độ cồn của tỷ lệ nấm men cố định

3% (1%) nhưng do tỷ lệ tế bào quá lớn sẽ không đủ cơ chất cho các tế bào hoạt động

một cách tối ưu nhất.

Từ những kết quả cho thấy tỷ lệ nấm men cố định bổ sung vào môi trường lên

men là 3% là tỷ lệ tối ưu để lên men vỏ ca cao thu bioethanol.

3.3 Khả năng tái sử dụng chế phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố

định trên gel PVA để lên men

Một trong những ưu điểm lớn nhất của kỹ thuật cố định tế bào là khả năng tái sử

dụng cho nhiều quá trình lên men mà không cần phải tách tế bào ra khỏi giá thể chất

mang giảm thời gian sản xuất ra sản phẩm. Hạt gel có thành phần là PVA chứa tế bào

vi sinh vật cố định có cấu trúc bền chắc, không thay đổi nhiều sau các chu kỳ lên men.

Chế phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố định trên gel PVA có khả năng

tái sử dụng. Sau khi cho tế bào cố định vào môi trường lên men lần đầu tiên tới thời

gian tối ưu của quá trình lên men thì tiếp tục cho vảo môi trường lên men từ vỏ ca cao

lần thứ 2, sau đó là lần thứ 3. Ta có được kết quả khảo sát.

Đồ án tốt nghiệp

1.2

)

%

0.8

0.6

0.4

( n ồ c ộ đ g n ồ N

0.2

2 Số lần tái sử dụng

Độ cồn

6.40

6.20

6.00

5.80

5.60

a. Biến đổi nồng độ cồn theo số lần tái sử dụng.

H p

5.40

5.20

5.00

4.80

2 Số lần tái sử dụng

b. Biến đổi nồng pH theo số lần tái sử dụng.

Đồ án tốt nghiệp

30.0

25.0

) l

20.0

m / g m

15.0

( g n ợ ư

l

10.0

m à H

5.0

0.0

2 Số lần tái sử dụng

Glucose

Cellucose

c. Biến đổi nồng hàm lượng đường khử và hàm

96.0

94.0

92.0

lượng cellulose theo số lần tái sử dụng.

)

%

90.0

88.0

86.0

( t ấ u s u ệ i H

84.0

82.0

80.0

2 Số lần tái sử dụng

Glucose

Cellucose

c. Hiệu suất lên men ethanol sau mỗi lần tái sử dụng.

Hình 3.8 Sự thay đổi các thành phần qua số lần tái sử dụng

Đồ án tốt nghiệp

❖ Nhận xét:

Dựa vào đồ thị ta thấy, qua 3 lần tái sử dụng (TSD) ta thấy độ cồn giảm dần từ

lần 1 (1%) xuống lần TSD 2 (0,9 % ± 0,1) và tiếp tục giảm ở lần TSD 3 (0,7% ± 0,06).

pH tăng dần từ lần tái sử dụng thứ nhất (5,42 ± 0,08) đến lần tái sử dụng thứ ba

(6,1 ± 0,1) việc pH tăng sẽ ảnh hưởng rất lớn tới nấm men trong hạt gel cố định, ở pH

tối ưu thì nấm men cố định nằm trong hạt mới có thể tiếp tục hoạt động trao đổi chất

sinh ethanol.

Hàm lượng đường khử tăng từ lần thứ nhất (4,1 ± 0,05 mg/ml) tới lần thứ 2 (4,6 ±

0,22 mg/ml) và giảm tiếp lần tái sử dụng thứ 3 (3,4 ± 0,19 mg/ml). Tế bào cố định từ

lần TSD 1 sang lần TSD 2 nấm men cố định vẫn tiếp tục sử dụng đường lên men tạo

ethanol nên hàm lượng đường, tuy nhiên hoạt động đã giảm nên đường tăng là do một

lượng cellulose bị thủy phân thành đường, còn từ lần TSD 2 sang lần TSD 3 hàm

lượng đường tăng chứng tỏ hoạt động của nấm men cố định đã giảm đi. Hàm lượng

Từ đó có thể thấy được chế phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố định trên

cellulose giảm dần từ lần tái sử dụng thứ nhất tới lần tái sử dụng thứ 3.

gel PVA có khả năng tái sử dụng.

Đồ án tốt nghiệp

CHƯƠNG 4. KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ

4.1 Kết luận

Khi khảo sát nồng độ PVA và nồng độ acid boric để đạt được mật độ tế bào cao

nhất:

- Với cả hai chủng nấm men Saccharomyces ceresiviae và Pichia anomala: nồng

độ chất tạo hạt PVA 12% - alginate 1,0% và dung dịch tạo hạt acid boric 7,0% - CaCl2

2,0% là tối ưu cho quá trình cố định tế bào nấm men.

Các yếu tố ảnh hưởng đến quá trình lên men sử dụng tế bào cố định:

Từ các thí nghiệm khảo sát các yếu tố, rút ra được các thông số tối ưu để sử

dụng tế bào P. anomala và S. ceresiviae cố định trên chất mang PVA-alginate trong

quá trình lên men từ vỏ ca cao đạt độ cồn cao nhất:

Thời gian lên men: 54 giờ -

pH lên men: 5,5 -

Tỷ lệ nấm men cố định bổ sung vào môi trường lên men: 3% -

Chế phẩm lên men S.cerevisiae và P.anomala cố định trên gel PVA có khả năng

tái sử dụng.

4.2 Kiến nghị

Do điều kiện thời gian hạn hẹp nên quá trình chỉ nghiên cứu khả năng cố định tế

bào trên PVA chưa khảo sát được bao nhiêu lần tái sử dụng của nấm men cố định.

Hiệu suất lên men trong đề tài chưa cao nên cần nghiên cứu khảo sát việc tăng

mật độ tế bào để cải thiện hiệu suất lên men.

Đẩy mạnh việc ứng dụng các kết quả nghiên cứu vào thực tiễn sản xuất.

Đầu tư cho các dự án sản xuất bioethanol.

Đồ án tốt nghiệp

TÀI LIỆU THAM KHẢO

TÀI LIỆU TIẾNG VIỆT

1. Võ Thị Thúy Huệ, 2013. Nghiên cứu sản xuất thanol sinh học từ vỏ cacao, Nghiên cứu

khoa học, đại học Nông Lâm TP.Hồ Chí Minh.

2. Nguyễn Thị Hằng Nga, Nghiên cứu khả năng sản xuất bioethanol sinh học từ phụ

phẩm nông nghiệp. Luận văn thạc sĩ, ĐH Khoa Học Tự Nhiên Tp HCM, Việt Nam,

2009.

3. Phạm Thị Hồng Nga, 2007. Tổng quan tài liệu về các phương pháp cố định tế bào

nấm men rượu vang, luận văn tốt nghiệp, Đh Bách Khoa, TP. Hồ Chí Minh.

4. Nguyễn Văn Pháp, 2013. Bước đầu khảo sát tiền xử lý và thủy phân vỏ cacao để làm

nguyên liệu cho quá trình lên men bioethanol bằng saccharomyces cerevisiae, Khóa

luận tốt nghiệp đại học, đại học Cần Thơ, Việt Nam .

5. Lê Văn Việt Mẫn, Bùi Thanh Huyền, Rượu lên men với nồng độ glucose ban defferent

bằng cách sử dụng nấm men cố định trong gel alginate, Tạp chí phát triển KH & CN,

tập 11, SO 12- 2008

6. Nguyễn Lê Minh Thông (2013), Sản xuất bioethanol từ nguyên liệu vỏ cacao bằng

phuong pháp thủy phân và lên men đồng thời, Khóa luận tốt nghiệp đại học, Ðại học

Tôn Ðức Thắng, Việt Nam.

7. Nguyễn Ðức Lượng (2011), Công nghệ enzyme, Nhà xuất bản Ðại học Quốc gia Tp Hồ

8. Nguyễn Văn Phát (2013), Buớc đầu khảo sát tiền xử lý và thủy phân vỏ cacao để làm

Chí Minh.

nguyên liệu cho quá trình lên men bioethanol bằng Saccharomyces cerevisiae,

Khóa luận tốt nghiệp đại học, Ðại học Cần Thơ, Việt Nam.

TÀI LIỆU NƯỚC NGOÀI

1. Graeme M.Wal-ker,London business School, August 10-2010, Bioethanol and

technology of fuel alcohol, 8-9

Đồ án tốt nghiệp

2. Kourkoutas, Y., Bekatorou, A., Banat, I.M., Koutionas, A.A., Immobilization

technologies and support materials suitable in alcohol berverages production: a review,

Food Microbiology, Vol.21, 2004, 377 – 397.

3. Kourkoutas, Y., Kanellaki, M., Koutinas, A.A., Apple pieces as immobilization

support of various microorganisms, LWT, Vol.39, 2006, 980-986.

4. Martynenko, N. N. and Gracheva, L. M., Physiological and Biochemical

Characteristics of Immobilized Champagne Yeats and Their Participation in

Champagnizing Processes: A Review, Applied Biochemistry and Microbiology, Vol.

39, No. 5, 2003, 439-445.

5. Biofuel Production”, Industrial & Engineering Chemistry Research, 48, 3713-3729.

6. Bickerstaff, Gordon F., Immobilization of enzims and cells, 367p.

TÀI LIỆU TỪ INTERNET

7. Các nhà máy ethanol việt nam, http://dayvahoc.blogspot.com/2013/09/cac-nha-may-

ethanol-viet-nam.html

8. Bioethanol, https://de.wikipedia.org/wiki/Bioethanol

9. Nguyễn Văn Chính, Nhiên liệu sinh học - nguồn năng lượng tái tạo trong tương lai,

http://www.vinachem.com.vn/Desktop.aspx/Xuat-ban-pham/So-3-2005/1749/

10. Tình hình phát triển ca cao Việt Nam,

http://cacao.khuyennongvn.gov.vn/news/tID47_Tinh-hinh-phat-trien-cacao-Viet-

Nam.html

11. Tìm hiểu về xăng sinh học, http://mt.gov.vn/moitruong/tin-tuc/1129/35215/tim-hieu-

ve-xang-sinh-hoc-.aspx

12. Tình hình ngiên cứu và sản xuất nhiên liệu sinh học trên thế giới và ở Việt Nam,

http://thegioidaunhon.vn/vn/detail/news/tinh-hinh-nghien-cuu-va-san-xuat-nhien-lieu-

sinh-hoc-tren-the-gioi-va-viet-nam/1265.

13. Tổng quan về nhiên liệu sinh học, https://www.pvoil.com.vn/vi-VN/pvoil/chinh-sach-

chien-luoc/tong-quan-ve-nhien-lieu-sinh-hoc/281/639.

Đồ án tốt nghiệp

PHỤ LỤC A

Phụ lục A1: Cách dựng đường chuẩn glucose

Cân chính xác 1g glucose hòa tan trong 200 mL nước cất.

Hút lần lượt 1, 2, 3, 4, 5 mL dung dịch đường glucose vào 5 bình định

mức 50 mL, thêm nước cất đến vạch mức. Các dung dịch mới pha này có nồng độ

glucose lần lượt là 0,1; 0,2; 0,3; 0,4; 0,5 mg/mL.

Hút 1 mL dung dịch glucose ở mỗi nồng độ vào 5 ống nghiêm, thêm

3mL thuốc thử DNS.

Mẫu trắng: Hút 1 mL nước cất cho vào ống nghiệm, thêm 3 mL thuốc

thử DNS.

Nung cách thủy hỗn hợp trong 15-20 phút. Làm lạnh nhanh rồi đo OD ở

bước sóng 540 nm.

Từ giá trị OD, vẽ đồ thị đường chuẩn glucose.

Đồ thị đường chuẩn glucose

)

y = 3.4557x + 0.1066 R² = 0.9907

1.793

L m / g m

1.573

1.166

( e s o c u l g

g n ợ ư

0.706

l

0.438

m à H

2 1.8 1.6 1.4 1.2 1 0.8 0.6 0.4 0.2 0 0.147 0

0.1

0.2

0.4

0.5

0.6

0.3 Mật độ quang OD

Đồ án tốt nghiệp

Dung dịch cellulose chuẩn (20 mg/mL): cân chính xác 1g cellulose hòa

Phụ lục A2: Cách dựng đường chuẩn cellulose

Hút lần lượt 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 mL dung dịch cellulose vào 6 bình định

tan trong 50 mL nước cất.

mức 100 mL,thêm nước cất đến vạch mức.Các dung dịch mới pha này có nồng độ

Cho 5mL thuốc thử anthrone vào mỗi ống nghiệm chứa 0,5mL dung dịch

cellulose lần lượt là 0,2; 0,4; 0,6; 0,8; 1,0; 1,2; 1,4 mg/mL.

Mẫu trắng: Hút 0,5 mL nước cất cho vào ống nghiệm, thêm 5mL thuốc

trên.

Nung cách thủy trong 5 phút. Làm lạnh nhanh rồi đi đo OD ở bước sóng

thử anthrone.

Từ giá trị OD, vẽ đồ thị đường chuẩn cellulose.

630nm.

Đồ thị đường chuẩn celulose

y = 1.3455x + 0.0069 R² = 0.992

1.843

1.597

1.376

1.157

0.857

D O g n a u q ộ đ t ậ M

0.552

2 1.8 1.6 1.4 1.2 1 0.8 0.6 0.4 0.2 0

0.201 0.2

0.4

0.6

1.2

1.4

1.6

0.8 Hàm lượng cellulose (mg/mL)

Đồ án tốt nghiệp

Phụ lục A3: Xây dựng đường cong sinh trưởng Saccharomyces ceresiviae

Điều kiện nuôi cấy:

Môi trường Sabouraud Dextrose Broth

30oC

Nuôi cấy tĩnh

Tỷ lệ giống bổ sung ban đầu 1%, mật độ 95,78 x 106 cfu/mL.

Đường cong sinh trưởng

8.5

7.5

6.5

) L m / u f c ( g o

l

5.5

Thời gian( giờ)

Phụ lục A4: Đường tương quan OD- mật độ tế bào Saccharomyces ceresiviae

Đường tương quan giữa mật độ quang OD-mật độ tế bào nấm men S.cerevisiae

được cung cấp bởi Phòng thí nghiệm Nhiên liệusinh học và Biomass, Trường đại học

Bách Khoa - Đại học Quốc gia thành phố Hồ Chí Minh.

Đường tương quan OD- mật độ tế bào S. ceresiviae

) l

m

/

6.9

6.8

6 - 0 1 x

6.7

y = 1.3775x + 6.2834 R² = 0.9763

6.6

o à b ế t

6.5

ố s ( g o l

6.4

6.3

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6 OD

Đồ án tốt nghiệp

Phụ lục A3: Xây dựng đường cong sinh trưởng Pichia anomala

- Môi trường Sabouraud Dextrose Broth

Điều kiện nuôi cấy:

P.anomala được hoạt hóa trước 24 giờ trong môi trường mới SDB để nấm men

phát triển sinh khối, tiếp sau đó được sử dụng để xây dựng đường tương quan giữa mật

y = 1.6486x + 7.5527 R² = 0.9824

độ quang OD-mật độ tế bào nấm men.

)

/

L m u f c ( g o l

8.5 8.4 8.3 8.2 8.1 8 7.9 7.8 7.7 7.6

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

OD

Tương quan giữa mật đọ quang OD-mật độ tế bào P.anomala

Khảo sát đường cong sinh trưởng của P.anomala dựa vào phương pháp xác định mậtđộ

tế bào gián tiếp bằng đường tương quan OD- mật độ tế bào P.anomala.

9.5 9.06 8.94

)

9 8.53

/

8.5

7.77

L m u f c ( g o l

8 7.59

7.5

0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48

thời gian khảo sát (giờ)

Đường cong sinh trưởng của P.anomala

Đường tương quan giữa mật độ quang OD-mật độ tế bào nấm men S.cerevisiae được

cung cấp bởi Phòng thí nghiệm Nhiên liệu sinh học và Biomass, Trường đại học Bách

Khoa - Đại học Quốc gia thành phố Hồ Chí Minh.

Đồ án tốt nghiệp

PHỤ LỤC B KẾT QUẢ XỬ LÝ SỐ LIỆU

Bảng 1. Kết quả khảo sát thời gian sử dụng chế phẩm S.cerevisiae và P. anomala cố định

Thời gian

Hàm lượng

Hàm lượng cồn

(giờ)

đường khử

cellulose

(%)

(mg/mL)

6,73 ± 0,12

7,74 ± 0,24

1,77 ± 0,15

5,47 ± 0,15

5,48 ± 0,07

5,66 ± 0,12

1,87 ± 0,15

5,42 ± 0,02

6,39 ± 0,22

4,81 ± 0,07

1,87 ± 0,12

5,46 ± 0,02

7,66 ± 0,09

3,82 ± 0,15

1,83 ± 0,15

5,45 ± 0,03

8,24 ± 0,05

2,42 ± 0,19

1,90 ± 0,10

5,53 ± 0,06

8,31 ± 0,07

2,85 ± 0,13

1,87 ± 0,15

5,50 ± 0,09

trên chất mang PVA để lên men thu bioethanol từ vỏ cacao

Bảng 2. Kết quả khảo sát pH môi trường lên men sử dụng chế phẩm S.cerevisiae và P.

Hàm lượng

Hàm lượng cồn

đường khử

cellulose

(%)

(mg/mL)

4,5

4,12 ± 0,14

5,9 ± 0,09

0,77 ± 0,06

3,47 ± 0,11

3,6 ± 0,03

0,93 ± 0,06

5,5

2,49 ± 0,27

6,2 ± 0,62

0,97 ± 0,12

anomala cố định trên chất mang PVA để lên men thu bioethanol từ vỏ cacao

Đồ án tốt nghiệp

Bảng 3. Kết quả khảo sát tỷ lệ nấm men cố định bổ sung vào môi trường lên men sử dụng

chế phẩm S.cerevisiae và P. anomala cố định trên chất mang PVA để lên men thu

Tỷ lệ nấm

Hàm lượng

Hàm lượng cồn

men (%)

đường khử

cellulose

(%)

(mg/mL)

2,59 ± 0,06

7,1 ± 1,08

1,00 ± 0,00

5,33 ± 0,07

2,14± 0,07

2,3 ± 0,16

0,87 ± 0,06

5,03 ± 0,11

3,41 ± 0,19

3,6 ± 0,20

0,97 ± 0,06

5,27 ± 0,08

4,57 ± 0,26

19,4 ± 0,56

0,9 ± 0,10

5,33 ± 0,06

bioethanol từ vỏ cacao

Bảng 4. Kết quả khảo sát khả năng tái sử dụng chế phẩm S.cerevisiae và P. anomala cố

Hàm lượng

TSD

Hàm lượng cồn

đường khử

cellulose

(lần)

(%)

(mg/mL)

4,09 ± 0,05

24,77 ± 3,65

1,00 ± 0,00

5,42 ± 0,08

4,17 ± 0,24

23,20 ± 1,47

0,87 ± 0,15

5,80 ± 0,16

4,65 ± 0,22

10,17 ± 0,21

0,67 ± 0,06

6,10 ± 0,10

định trên chất mang PVA để lên men thu bioethanol từ vỏ cacao

Đồ án tốt nghiệp

PHỤ LỤC C

HÌNH ẢNH

1. Saccharomyces cerevisiae

a) Khuẩn lạc S.cerevisiae

c) Cấy ria giữ giống S.cerevisiae

b) Tăng sinh S.cerevisiae

Đồ án tốt nghiệp

2. Pichia anomala

c) Cấy ria giữ giống P.anomala a) Khuẩn lạc P.anomala

d) Ly tâm thu sinh khối tế bào b) Tăng sinh P.anomala

Đồ án tốt nghiệp

3. Chế phẩm S.cerevisiae và P. anomala cố định trên chất mang PVA để lên men

a) Nồng độ PVA 10%, alginate 1%,

thu bioethanol từ vỏ cacao

c) nồng độ PVA 12%, alginate 1%,

dung dịch acid boric (H3BO3) 7% và dung dịch acid boric (H3BO3) 7% và

CaCl2 2% CaCl2 2%

b) nồng độ PVA 11%, alginate 1%, d) nồng độ PVA 13%, alginate 1%,

dung dịch acid boric (H3BO3) 7% và dung dịch acid boric (H3BO3) 7% và

CaCl2 2% CaCl2 2%

Đồ án tốt nghiệp

e) Nồng độ chất mang PVA 14%, alginate 1%

b) Hạt gel PVA – alginate khi cho vào môi

a) Hạt gel PVA-alginate trước khi cho vào

môi trường lên men

trường lên men

dung dịch acid boric (H3BO3) 7% và CaCl2 2%

Đồ án tốt nghiệp

Đồ án tốt nghiệp: Thử nghiệm cố định Saccharomyces cerevisiae và Pichia anomala trên chất mang PVA-alginate và ứng dụng trong lên men thu nhận ethanol từ vỏ cacao

Chủ đề:

Báo cáo thực tập kỹ thuật công nghệ

Báo cáo thực tập kỹ thuật hóa học

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CÔNG NGHỆ TP. HỒ CHÍ MINH

ĐỒ ÁN TỐT NGHIỆP THỬ NGHIỆM CỐ ĐỊNH SACCHAROMYCES

CEREVISIAE VÀ PICHIA ANOMALA TRÊN CHẤT

MANG PVA – ALGINATE VÀ ỨNG DỤNG TRONG

LÊN MEN THU NHẬN ETHANOL TỪ VỎ CACAO

CÔNG NGHỆ SINH HỌC

TP. Hồ Chí Minh, 2016

MỤC LỤC

DANH MỤC CÁC TỪ VIẾT TẲT

DANH MỤC BẢNG

Bảng 1.1 Đặc tính hóa lý của ethanol

DANH MỤC HÌNH ẢNH

Hình 3.1. Mật độ tế bào cố định trên PVA

LỜI MỞ ĐẦU

CHƯƠNG 1. TỔNG QUAN TÀI LIỆU

Hình 1.7. Saccharomyces cereviciae (wikipedia)

Phân loại khoa học

Đặc điểm hình thái

Ứng dụng trong lên men

Chất

Tên để tài

Tác giả

Tế bào cố định

Nội dung

mang

CHƯƠNG 2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

CHƯƠNG 3. KẾT QUẢ VÀ BÀN LUẬN

l

/

m u f c g o l o à b ế t ộ đ t ậ M

8 7 6 Nồng độ acid boric (%)

)

%

( t ấ u s u ệ i H

Nồng độ acid boric (%)

l

/

m u f c g o l o à b ế t ộ đ t ậ M

8 7 6 Nồng độ acid boric (%)

)

%

( t ấ u s u ệ i H

7 Nồng độ acid boric (%)

)

%

( n ồ c

ộ đ g n ồ N

Thời gian (giờ)

H p

Thời gian (giờ)

) l

m / g m

(

g n ợ ư

l

m à H

Thời gian (giờ)

)

%

( t ấ u s u ệ i H

51 48 Thời gian (giờ)

)

%

( n ồ c ộ đ g n ồ N

5 pH

) l

m / g m

( g n ợ ư

l

m à H

5 pH

)

%

i

( t ấ u s u ệ H

pH