i
ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN TRƯỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC ––––––––––––––––––––
NGUYỄN THỊ HẢI HỒNG
NGHIÊN CỨU TÁC ĐỘNG CỦA DỊCH CHIẾT LÁ KHÔI (ARDISIA GIGANTIFOLIA STAPF.) LÊN SỰ BIỂU HIỆN CỦA CÁC GEN KIỂM SOÁT CHU KỲ TẾ BÀO CỦA TẾ BÀO GỐC UNG THƯ DẠ DÀY
Chuyên ngành: Công nghệ Sinh học Mã số: 84 20 201
LUẬN VĂN THẠC SĨ SINH HỌC ỨNG DỤNG
Người hướng dẫn khoa học: TS. Lê Thị Thanh Hương
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
THÁI NGUYÊN - 2019
ii
LỜI CAM ĐOAN
Tôi xin cam đoan đây là nghiên cứu của tôi dưới sự hướng dẫn của TS.
Lê Thị Thanh Hương. Các số liệu và kết quả trình bày trong luận văn là trung
thực và chưa được ai công bố trong bất kỳ công trình nào. Mọi kết quả thu
được không chỉnh sửa, sao hoặc chép từ các nghiên cứu khác. Mọi trích dẫn
trong luận văn đều ghi rõ nguồn gốc.
Tác giả
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Nguyễn Thị Hải Hồng
iii
LỜI CẢM ƠN
Trong quá trình học tập và thực hiện đề tài luận văn tại Khoa Công
nghệ Sinh học, trường Đại học Khoa học, Đại học Thái Nguyên. Em đã nhận
được sự giúp đỡ nhiệt tình của các Thầy, Cô giáo, các anh chị kỹ thuật viên và
cán bộ trong khoa và nhà trường.
Đầu tiên em xin tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới Cô giáo - TS. Lê Thị Thanh
Hương đã định hướng khoa học, tận tình hướng dẫn, giúp đỡ và tạo mọi điều
kiện tốt nhất trong suốt quá trình em tiến hành nghiên cứu và hoàn thành luận
văn này.
Em xin chân thành cảm ơn các Thầy Cô và cán bộ Khoa Công nghệ
Sinh học, Trường Đại học Khoa học - Đại học Thái Nguyên đã tận tình dạy
dỗ, chỉ bảo và truyền cho em niềm đam mê nghiên cứu khoa học. Xin chân
thành cảm ơn bộ phận sau đại học của nhà trường đã tạo điều kiện thuận lợi
trong quá trình em học tại trường.
Nghiên cứu này được tài trợ bởi Quỹ Phát triển Khoa học và Công
nghệ Quốc gia (Nafosted) trong mã số đề tài 108.05-2017.331.
Cuối cùng, em xin chân thành cảm ơn gia đình, bạn bè, đồng nghiệp đã
nhiệt tình động viên cho em thêm động lực hoàn thành tốt quá trình học tập và
nghiên cứu khoa học.
Thái Nguyên, tháng 11 năm 2019
Tác giả
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Nguyễn Thị Hải Hồng
iv
MỤC LỤC
MỞ ĐẦU .......................................................................................................... 1
1. Lý do chọn đề tài ........................................................................................... 1
2. Mục tiêu nghiên cứu ...................................................................................... 2
3. Nội dung nghiên cứu ..................................................................................... 2
CHƯƠNG 1. TỔNG QUAN TÀI LIỆU ........................................................ 3
1.1. Ung thư dạ dày và tế bào gốc ung thư dạ dày ............................................ 3
1.1.1. Ung thư dạ dày ........................................................................................ 3
1.1.2. Tế bào gốc và tế bào gốc ung thư dạ dày ................................................ 9
1.2. Chu kỳ tế bào và ung thư ......................................................................... 12
1.2.1. Khái quát chung về chu kỳ tế bào ......................................................... 12
1.2.2. Rối loạn chu kỳ tế bào và ung thư ........................................................ 14
1.2.3. Các gen kiểm soát chu kỳ tế bào ........................................................... 16
1.3. Giới thiệu chung về cây Lá khôi .............................................................. 19
1.3.1. Phân loại và đặc điểm ........................................................................... 19
1.3.2. Thành phần hóa học của cây Lá khôi .................................................... 20
1.3.3. Các nghiên cứu về tác dụng của cây Lá khôi trong điều trị ung thư .... 22
CHƯƠNG 2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU ............. 25
2.1. Vật liệu nghiên cứu .................................................................................. 25
2.2. Hóa chất và thiết bị nghiên cứu................................................................ 25
2.3. Địa điểm và thời gian nghiên cứu ............................................................ 25
2.4. Phương pháp nghiên cứu .......................................................................... 25
2.4.1. Phương pháp thu thập và xác định tên khoa học của cây Lá khôi ........ 25
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
2.4.2. Phương pháp thu dịch chiết cây Lá khôi ............................................... 26
v
2.4.3. Phương pháp nuôi cấy tế bào 2D .......................................................... 26
2.4.4. Phương pháp nuôi cấy tế bào 3D .......................................................... 26
2.4.5. Phương pháp phân tích chu kỳ tế bào bằng Flow cytometry ................ 27
2.4.6. Phương pháp phân tích miễn dịch huỳnh quang ................................... 27
2.4.7. Phương pháp tách chiết RNA tổng số và tổng hợp cDNA ................... 28
2.4.8. Phương pháp phân tích biểu hiện gen bằng Realtime PCR .................. 28
2.4.9. Phương pháp phân tích thống kê ........................................................... 29
CHƯƠNG 3. KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN ................... 30
3.1. Kết quả thu thập và xác định tên khoa học và thu dịch chiết ethanol cây
Lá khôi ............................................................................................................. 30
3.2. Nuôi cấy tăng sinh tế bào trong điều kiện nuôi cấy 2D ........................... 30
3.3. Nuôi cấy tumorsphere của các tế bào ung thư dạ dày trong điều kiện nuôi
cấy 3D ............................................................................................................. 31
3.4. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên số lượng và kích thước các
tumorsphere ..................................................................................................... 33
3.5. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên chu kỳ tế bào .............................. 32
3.6. Tách chiết RNA tổng số và tổng hợp cDNA ........................................... 34
3.7. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên các gen của tế bào gốc ung thư .. 35
3.8. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên các gen kiểm soát chu kỳ tế bào ... 38
3.9. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên sự biểu hiện của protein P21 ...... 41
KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ ...................................................................... 43
1. KẾT LUẬN ................................................................................................. 43
2. KIẾN NGHỊ ................................................................................................ 43
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
TÀI LIỆU THAM KHẢO ............................................................................ 44
vi
DANH MỤC CÁC TỪ VIẾT TẮT
ALDH : Aldehyde dehydrogenase
CDK : Cyclin-dependent kinases
CCNE1 : Cyclin E1
CT : Cryptotanshinone
cDNA : Complementary DNA
DNA : Deoxyribonucleic acid
FACS : Fluorescence-activated cell sorting
GC : Ung thư biểu mô dạ dày
mRNA : RNA thông tin
NST : Nhiễm sắc thể
PCNA : Proliferating cell nuclear antigen
PCR : Polymerase Chain Reaction
RNA : Ribonucleic acid
SAGA : Spt-Ada-Gcn5-acetyltransferase
SSE : Samsoeum
TBGUT : Tế bào gốc ung thư
TBGUTDD : Tế bào gốc ung thư dạ dày
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
USP22 : Ubiquitin specific peptidase 22
vii
DANH MỤC CÁC BẢNG
Bảng 1.1. Các pha trong chu kỳ tế bào ......................................................... 13
Bảng 2.1. Mã số cặp mồi của các gen ............................................................. 28
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Bảng 3.1. Nồng độ RNA từ mẫu đối chứng và mẫu xử lý.............................. 35
viii
DANH MỤC CÁC HÌNH
Hình 1.1. Số ca ung thư mắc mới năm 2018 ở nam của Việt Nam ................. 4
Hình 1.2. Cơ chế phân chia của tế bào ung thư ............................................. 16
Hình 3.1. Mẫu cây Lá khôi ............................................................................. 30
Hình 3.2. Nuôi cấy tăng sinh tế bào MKN45 trong điều kiện nuôi cấy 2D ....... 30
Hình 3.3. Nuôi cấy tumorpshere hình thành từ các tế bào gốc ....................... 31
Hình 3.4. Dịch chiết Lá khôi tác động lên khả năng hình thành tumorsphere ... 32
Hình 3.5. Dịch chiết Lá khôi tác động lên chu kỳ tế bào ............................... 33
Hình 3.6. Phổ hấp thụ của RNA tổng số tách chiết từ các tumorsphere......... 35
Hình 3.7. Dịch chiết Lá khôi tác động lên sự biểu hiện các gen ................... 36
Hình 3.8. Dịch chiết Lá khôi tác động lên các gen ........................................ 39
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Hình 3.9. Dịch chiết Lá khôi tác động lên sự biểu hiện của protein .............. 42
1
MỞ ĐẦU
1. Lý do chọn đề tài
Việt Nam là một nước có sự đa dạng về các loài thực vật, trong đó có
các loài thực vật làm thuốc. Họ Đơn nem (Myrsinaceae) gồm 50 chi và
khoảng 1.400 loài được phân bố rộng rãi trên khắp thế giới. Trong đó, chi
cơm nguội (Ardisia) có khoảng 400 – 500 loài trên thế giới và ở Việt Nam có
khoảng 101 loài [2]. Các loài trong chi này có nhiều tác dụng trong điều trị
bệnh, bảo vệ sức khỏe cho con người, điển hình là cây Lá khôi (Ardisia
gigantifolia Stapf).
Ung thư dạ dày là một trong những dạng ung thư phổ biến nhất, được
thống kê là dạng ung thư phổ biến thứ 5 và là nguyên nhân gây tử vong thứ 3
trong nhóm các bệnh ung thư. Các tế bào gốc ung thư dạ dày là nguyên nhân
gây ra các khối u dạ dày. Tế bào gốc ung thư dạ dày còn gọi là "tế bào nguồn"
của ung thư dạ dày, có nguồn gốc chủ yếu từ các tế bào gốc hoặc các tế bào
gốc định hướng dạ dày. Trong những năm gần đây, rất nhiều các nghiên cứu
cho thấy ung thư dạ dày có thể bắt nguồn từ các tế bào gốc bình thường hoặc
các tế bào trung mô có nguồn gốc từ tủy xương và các khối u dạ dày có chứa
các tế bào gốc ung thư [71]. Các khối u có thể bắt nguồn từ một tiểu quần thể
tế bào gốc ung thư có khả năng duy trì sự phát triển khối u lâu dài, tái phát
khối u, kháng apoptosis và hóa trị.
Các nghiên cứu trước đây đã chỉ ra rằng, có nhiều hợp chất chiết xuất
từ dịch chiết của các bộ phận cây Lá khôi ảnh hưởng đến sự tăng sinh biểu
mô tuyến vú, gây độc tế bào đối với các dòng tế bào ung thư như: ung thư
bàng quang, ung thư biểu mô tế bào gan, ung thư cổ tử cung,... [14], [57]. Đặc
biệt đối với ung thư dạ dày, dịch chiết Lá khôi có khả năng biệt hoá tế bào
gốc ung thư dạ dày và ít độc cho các tế bào và khả năng ức chế cao sự phân
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
chia nhưng ít gây ra apoptosis [7]. Tuy nhiên, các nghiên cứu về ảnh hưởng
2
của Lá khôi lên sự biểu hiện của các gen kiểm soát chu kỳ tế bào của các tế
bào gốc ung thư dạ dày còn hạn chế. Vì vậy, chúng tôi đã tiến hành nghiên
cứu đề tài “Nghiên cứu tác động của dịch chiết Lá khôi (Ardisia
gigantifolia Stapf.) lên sự biểu hiện của các gen kiểm soát chu kỳ tế bào
của tế bào gốc ung thư dạ dày”.
2. Mục tiêu nghiên cứu
Đánh giá tác động của dịch chiết Lá khôi lên mức độ biểu hiện của các
gen điều khiển chu kỳ tế bào của tế bào gốc ung thư dạ dày.
3. Nội dung nghiên cứu
Nội dung 1: Thu thập mẫu Lá khôi và tách chiết dịch chiết Lá khôi.
Nội dung 2: Nuôi cấy các spheroid hình thành từ tế bào gốc ung thư
dạ dày.
Nội dung 3: Phân tích ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên sự biểu
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
hiện của các gen kiểm soát chu kỳ tế bào bằng phương pháp Realtime PCR.
3
CHƯƠNG 1. TỔNG QUAN TÀI LIỆU
1.1. Ung thư dạ dày và tế bào gốc ung thư dạ dày
1.1.1. Ung thư dạ dày
1.1.1.1. Khái quát chung về dịch tễ học ung thư dạ dày
Ung thư dạ dày là một trong những bệnh ung thư phổ biến và gây tử
vong hàng đầu, đặc biệt là ở đàn ông lớn tuổi. Theo nguồn dữ liệu
GLOBOCAN 2018, ung thư dạ dày là loại ung thư phổ biến thứ 5 và ung thư
gây tử vong cao thứ 3, với ước tính 783.000 ca tử vong trong năm 2018 [1].
Vào năm 2018 theo số liệu của Tổ chức Y tế Thế giới (WHO), ung thư đang
là gánh nặng về y tế trên toàn cầu với 18,1 triệu ca mới mắc và 9,6 triệu ca tử
vong trong năm 2018. Tổng số bệnh nhân ung thư sống thêm 5 năm là 43,8
triệu người [78]. Hiện nay, ung thư dạ dày là loại ung thư đứng hàng thứ năm
với 1 triệu ca mắc mới chiếm 5,7%, chỉ sau ung thư phổi, ung thư vú ở nữ,
ung thư đại trực tràng và ung thư tiền liệt tuyến. Ung thư phổi là nguyên nhân
hàng đầu gây tử vong với 1,8 triệu ca chiếm 18,4%, ung thư đại trực tràng
với 881.000 ca chiếm 9,2%, ung thư dạ dày với 783.000 ca chiếm 8,2% [84].
Tỷ suất mới mắc chuẩn hoá theo tuổi của ung thư dạ dày trên phạm vi
toàn thế giới là 18/100.000 dân/năm. Tỷ suất mới mắc ung thư dạ dày cao
nhất ở các quốc gia Đông Á, tiếp theo là Trung và Đông Âu và thấp nhất là ở
các quốc gia Tây Phi. Tỷ suất mới mắc ở các quốc gia Đông Á vẫn là cao nhất
[28]. Tỷ lệ bệnh và tỷ lệ tử vong của ung thư dạ dày trên thế giới đã giảm
đáng kể trong 3 thập niên gần đây. Tỷ lệ giảm này được giải thích do điều
kiện sống được cải thiện, thay đổi thức ăn bằng việc sử dụng thức ăn tươi, đặc
biệt rau, quả tươi cùng với việc giảm tác nhân gây bệnh chủ yếu đó là trực
khuẩn Helicobacter pylori (HP) [70].
Việt Nam nằm trong khu vực tỷ lệ mắc ung thư dạ dày mới khá cao. Dựa
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
vào kết quả nghiên cứu của tác giả Bùi Diệu và cộng sự trong Chương trình
4
ghi nhận Ung thư Quốc gia, Việt Nam có tỷ suất ung thư dạ dày chuẩn hoá
theo tuổi ở nam giới có xu hướng tăng nhẹ (23,7/100.000 dân năm 2000 lên
24,5/100.000 dân năm 2010) [4]. Tương tự, tỷ suất ung thư dạ dày chuẩn hoá
theo tuổi ở nữ giới có xu hướng tăng nhẹ (10,8/100.000 dân năm 2000 lên
12,2/100.000 dân năm 2010). Ung thư dạ dày có xu hướng giảm dần theo thời
gian. Cho đến năm 2030, tỷ suất mắc mới ung thư dạ dày thô giảm xuống
7,9% chung cho cả nam và nữ, 10,3% cho nam giới và 7,3% cho nữ giới. Tỷ
suất mới mắc ung thư dạ dày chuẩn hoá theo tuổi chung và cả cho nam cũng
như nữ giảm (27/100.000 chung năm 2009 xuống 13,2/100.000 năm 2030;
cho nam: 41,4/100.000 năm 2009 xuống 19,6/100.000 năm 2030 và cho nữ:
16,3/100.000 năm 2009 xuống 11,4/100.000 năm 2030) [8].
Hình 1.1. Số ca ung thư mắc mới năm 2018 ở nam của Việt Nam
(Nguồn: Viet Nam Source: Globocan 2018) [79]
Năm 2018, GLOBOCAN cũng ghi nhận, tại Việt Nam tổng số ca ung
thư mới mắc là 164.671 (tỉ lệ từng loại ung thư mới mắc ở nam được thể hiện
ở hình 1.1), tổng số ca tử vong do ung thư là 114.871, tổng số ca ung thư sống
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
thêm sau 5 năm là 300.033 [10].
5
1.1.1.2. Các yếu tố liên quan đến dịch tễ ung thư dạ dày
Có rất nhiều yếu tố liên quan đến ung thư dạ dày trong đó nhiễm H.
pylori là yếu tố chính. Ngoài ra, yếu tố môi trường, điều kiện tiền ung thư và
yếu tố di truyền…
* Nhiễm H. pylori và ung thư dạ dày
Vào năm 1983, Marshall và Warren phân lập được vi khuẩn H. pylori từ
các mảnh sinh thiết biểu mô dạ dày, các nghiên cứu tiếp sau đó đã chứng
minh được nó có khả năng gây tổn thương niêm mạc dạ dày, gây viêm dạ dày
theo từng mức độ và dần dần dẫn đến dị sản, loạn sản rồi đến ung thư dạ dày.
H. pylori là loại vi khuẩn phổ biến, phát triển ở ống tiêu hóa. Vi khuẩn này
luôn có xu hướng tấn công niêm mạc dạ dày. Nhiễm H. pylori là nhiễm khuẩn
mãn tính, ảnh hưởng đến 50% dân số trên toàn thế giới nhưng <1% tiến triển
thành ung thư dạ dày [21]. Một điều đã được khẳng định là tỷ suất hiện mắc
của H. pylori liên quan mật thiết tới tỷ suất mắc ung thư dạ dày. Trên thế giới
có hơn 3,5 tỷ người nhiễm H. pylori và trên 700 triệu người bị bệnh lý đường
tiêu hóa liên quan đến nhiễm H. pylori. H. pylori liên quan đến tiến triển của
ung thư dạ dày như kích thích gây đợt cấp của viêm mãn tính làm cho biểu
mô niêm mạc dạ dày bị thay đổi, dẫn đến thay đổi yếu tố vi môi trường như
tăng các gốc tự do gây tổn thương DNA. H. pylori còn ảnh hưởng đến gen do
làm thay đổi quá trình metyl hóa gen áp chế ung thư như E-cadherin [20].
* Yếu tố môi trường
- Hút thuốc lá: Hút thuốc lá là một yếu tố nguy cơ làm tăng tỷ suất mắc
ung thư dạ dày cũng như một số loại ung thư khác. Những người hút thuốc lá
có nguy cơ mắc ung thư dạ dày cao hơn những người không hút thuốc lá là
1,6 lần. Trong một nghiên cứu ở quần thể lớn tại châu Âu cho thấy có 17,6%
ung thư dạ dày là do hút thuốc lá [49]. Những người bỏ thuốc lá giảm nguy cơ
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
mắc ung thư dạ dày sau 10 năm cai thuốc. Trong một phân tích tổng hợp gồm
6
42 nghiên cứu cho thấy ở những người hút thuốc, nguy cơ ung thư dạ dày
tăng lên xấp xỉ 1,53 lần cao hơn ở nam giới so với ở nữ [29].
- Sử dụng rượu: Có mối liên quan không nhất quán giữa mức độ sử dụng
rượu với ung thư dạ dày. Kết quả một phân tích gộp cho thấy sử dụng rượu làm
tăng nguy cơ ung thư dạ dày hơn 1,39 lần so với không sử dụng rượu. Bên
cạnh đó, trong một nghiên cứu tại cộng đồng lớn tại châu Âu, ở nhóm đối
tượng sử dụng rượu nặng có nguy cơ ung thư dạ dày gấp 1,6 lần ở nam và 1,4
lần ở nữ [30].
- Chế độ ăn giàu muối: Muối được biết đến là yếu tố làm tăng quá trình
viêm và làm tăng tác dụng của tác nhân gây ung thư dạ dày như N-methyl-N-
nitro-N-nitrosoguanidine. Muối làm mất đi hàng rào bảo vệ của niêm mạc dạ
dày. Tập quán ăn đồ ăn mặn ngâm muối của người Nhật làm tăng nguy cơ
ung thư dạ dày, những người Nhật di cư đến Hoa Kỳ đã thay đổi tập quán ăn
uống giống như người phương Tây đã giảm đáng kể tỷ lệ ung thư dạ dày [40].
* Các hợp chất Nitroso: Hợp chất N-nitroso được sinh ra sau khi dùng các
nitrate, một thành phần tự nhiên của thức ăn như rau, cà chua và được sử
dụng như là chất gia vị trong một vài loại bơ và thịt đã chế biến. Nitrate trong
chế độ ăn uống được hấp thu tại dạ dày và được bài tiết trong nước bọt ở dạng
cô đặc. Tại đó chúng bị các vi khuẩn ở miệng khử thành các nitrite. Các
nitrite có thể phản ứng với các hợp chất có thể nitrosat hóa như các amine,
amide và amino acid để tạo thành hợp chất N-nitroso. Người ta cũng quan sát
thấy có sự gia tăng nitrite dạ dày ở những bệnh nhân dị sản ruột, loạn sản và
ung thư dạ dày. Sử dụng các loại phân bón nitrate và các thức ăn dầm có chứa
các sản phẩm nitrosate cũng có liên quan với ung thư dạ dày [84].
- Thịt nạc đỏ: Ăn nhiều thịt đỏ và thịt chế biến sẵn làm tăng nguy cơ
ung thư tâm vị dạ dày đặc biệt ở những trường hợp bệnh nhân bị nhiễm H.
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
pylori. Do sắt của nhân Hem có trong thịt đỏ kích thích chất tiền thân của
7
nitroso. Kết quả nghiên cứu chỉ ra rằng cứ 50 g thịt nạc đỏ tăng thêm mỗi
ngày là tăng nguy cơ ung thư tâm vị dạ dày lên 2,45 lần [40].
- Rau, quả giàu vitamin C: Rau sống và quả giàu vitamin C là giảm nguy
cơ ung thư dạ dày. Vitamin C là giảm nguy cơ ung thư dạ dày do ức chế sự
hình thành các hợp chất nitroso. Một số vi chất dinh dưỡng nữa cũng làm
giảm nguy cơ ung thư dạ dày là đồng, vitamin E và caroten [40].
- Béo phì: Béo phì có liên quan đến ung thư đã được nghiên cứu trên
quần thể lớn số bệnh nhân ung thư. Trong một phân tích gộp gồm 16 nghiên
cứu đã chỉ ra rằng, béo phì có liên quan đến ung thư dạ dày đặc biệt là ở nam
giới trừ người châu Á [42].
- Tình trạng kinh tế xã hội: Bên cạnh sự khác nhau về giới, tỷ lệ ung thư
dạ dày cũng có liên quan với sự phân tầng xã hội. Tình trạng kinh tế xã hội có
tương quan ngược với tỷ lệ ung thư dạ dày. Những người có thu nhập thấp
thường có tỷ suất mắc ung thư dạ dày cao hơn những người có tình trạng kinh
tế-xã hội khá hơn [74].
- Địa lý: Một nét đặc biệt về dịch tễ ung thư dạ dày là tỷ lệ mắc ung thư
dạ dày có sự thay đổi theo từng khu vực địa lý và điều kiện kinh tế xã hội
khác nhau. Khoảng 60% trường hợp ung thư dạ dày trên thế giới xảy ra ở các
nước đang phát triển [22]. Tỷ lệ hiện mắc cao nhất là các nước Đông Á, đặc
biệt là Trung Quốc, Mongolia, Nhật Bản và Hàn Quốc (35,4 nam; 13,8 nữ),
Đông Âu (20,3 nam; 8,9 nữ) trong khi tỷ lệ hiện mắc thấp nhất là ở Bắc Mỹ
(5,5 nam; 2,8 nữ), Châu Phi (4,5 nam; 3,2 nữ). Trong vài thập niên qua, tỷ lệ
mắc mới trên toàn thế giới đều giảm và ước tính đến năm 2030, tỷ lệ giảm
hàng năm là 2,3% [17]. Ở một vài quốc gia, người ta cũng nhận thấy có sự
khác biệt về tỷ lệ mắc bệnh và tử vong giữa khu vực phía Bắc và khu vực phía
Nam, với những người ở phía Bắc có nguy cơ mắc và tử vong do ung thư dạ
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
dày cao hơn những người ở phía Nam [80].
8
- Tuổi, giới tính với ung thư dạ dày: Tuổi và giới được ghi nhận là những
yếu tố nguy cơ quan trọng của ung thư dạ dày. Nam giới có tỷ suất mắc gấp
đôi nữ giới theo thống kê của Bệnh viện K. Tuổi từ 50 trở lên có nguy cơ ung
thư dạ dày cao hơn so với độ tuổi trẻ hơn. Ở Hoa Kỳ, theo ghi nhận từ năm
2005-2009 thì tỷ lệ ung thư dạ dày là 1% ở độ tuổi từ 20-34, tỷ lệ này là 29%
ở độ tuổi từ 75-84, tuổi trung bình được chẩn đoán ung thư dạ dày ở giai đoạn
này là 70 [38].
1.1.1.3. Các liệu pháp điều trị ung thư dạ dày hiện nay
- Phẫu thuật: Trong điều trị ung thư phần dạ dày, phẫu thuật được xem là
phương pháp điều trị hiệu quả nhất. Các phương pháp điều trị khác như hóa
trị, xạ trị và miễn dịch... chỉ là phối hợp và có tính chất bổ trợ, hoặc áp dụng
trong trường hợp đặc biệt không có khả năng mổ. Tùy vào từng giai đoạn của
bệnh mà các phẫu thuật viên có thể đưa ra phương pháp điều trị phẫu thuật
khác nhau: Nếu bệnh ở giai đoạn sớm; khi khối u còn nằm trong lớp niêm
mạc hoặc dưới lớp niêm mạc, dùng phẫu thuật nội soi cắt bỏ niêm mạc là một
lựa chọn điều trị lý tưởng [13].
- Hóa trị: Ung thư dạ dày di căn vẫn là một bệnh không thể chữa khỏi.
Hóa trị đã được chứng minh là kéo dài sự sống mà không ảnh hưởng đến chất
lượng cuộc sống. Tỷ lệ đáp ứng dao động từ 10-30% đối với trị liệu đơn tác
nhân và 30-60% đối với trị liệu đa tác nhân. Hầu hết các nghiên cứu về hóa trị
bổ trợ không chứng minh được lợi thế sống sót và do đó, nó không được coi
là điều trị tiêu chuẩn ở hầu hết các trung tâm [36]. Hoá chất và xạ trị thường
chỉ định điều trị phối hợp khi điều trị phẫu thuật có tính chất không triệt để,
ung thư đã có di căn hạch và xâm lấn các tạng lân cận hoặc trong những
trường hợp ung thư dạ dày tiến triển không còn khả năng phẫu thuật. Nhược
điểm của hóa chất điều trị ung thư là chúng không có khả năng lựa chọn hay
không thể phân biệt được đâu là tế bào ung thư, đâu là tế bào lành vì vậy sẽ bị
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
ảnh hưởng tác dụng phụ rất nhanh [1].
9
- Xạ trị: Ung thư dạ dày tương đối đề kháng đối với xạ trị. Hiệu quả của
xạ trị đơn thuần hoặc phối hợp với hóa trị (hóa xạ trị liệu) chỉ giới hạn ở một
số bệnh nhân, nhưng vẫn chưa thực sự rõ ràng và cần phải được nghiên cứu
thêm [11]. Hầu hết các thử nghiệm cho thấy một lợi ích của liệu pháp điều trị
kết hợp so với hóa trị hoặc xạ trị đơn thuần. Việc sử dụng liệu pháp xạ trị
trước phẫu thuật, nội phẫu và cường độ điều trị trong ung thư dạ dày có triển
vọng nhưng cần nghiên cứu thêm [43].
- Điều trị đích: Điều trị đích là một trong những tiến bộ mới nhất hiện
nay trong điều trị ung thư dạ dày. Các thuốc điều trị đích tác dụng chọn lọc
lên tế bào ung thư ở mức phân tử, sinh hóa, di truyền mà không ảnh hưởng
lên chức năng của tế bào bình thường. Người ta đã và đang tiến hành nhiều
nghiên cứu pha II, III sử dụng các loại thuốc điều trị đích hướng đến các thụ
thể thuộc họ thụ thể yếu tố tăng trưởng thượng bì người, họ yếu tố tăng
trưởng nội mô mạch máu, và một số đích khác trên bệnh nhân ung thư dạ dày
[11].
1.1.2. Tế bào gốc và tế bào gốc ung thư dạ dày
Tế bào gốc là các tế bào sinh học có khả năng biệt hoá thành các tế bào
khác. Chúng được tìm thấy trong các sinh vật đa bào. Trong cơ thể sống, có
thể lấy tế bào gốc từ hai nguồn chính: mô cơ thể đã trưởng thành và trong
phôi giai đoạn sớm [56]. Ở động vật có vú, có hai loại tế bào gốc: tế bào gốc
phôi, được phân lập từ trong của phôi nang giai đoạn sớm và tế bào gốc
trưởng thành, được tìm thấy trong các mô khác nhau. Trong các sinh vật
trưởng thành, tế bào gốc và các tế bào tiền thân đóng vai trò như một hệ thống
sửa chữa cho cơ thể, chúng thay thế và bổ sung các tế bào lão hoá hoặc bị hư
hại ở người trưởng thành.
Tế bào gốc trưởng thành thường được sử dụng trong các liệu pháp y
khoa khác nhau. Tế bào gốc có thể được phát triển nhân tạo và chuyển đổi
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
(biệt hoá) thành các tế bào chuyên biệt với các đặc tính phù hợp với các tế bào
10
của các mô khác nhau như cơ và dây thần kinh. Các dòng tế bào phôi và các
tế bào gốc phôi tự thân sinh ra thông qua việc chuyển gen hạt nhân là những
phương pháp điều trị rất tiềm năng trong tương lai [73].
Đặc điểm quan trọng và hữu ích nhất của tế bào gốc là tự đổi mới.
Thông qua đặc tính này, có thể tìm thấy sự tương đồng giữa tế bào gốc và tế
bào ung thư: khối u thường có thể bắt nguồn từ sự biến đổi của tế bào gốc
bình thường, các con đường truyền tín hiệu tương tự có thể điều chỉnh sự tự
tái tạo trong tế bào gốc và tế bào ung thư và tế bào ung thư có thể bao gồm "tế
bào gốc ung thư" - những tế bào hiếm có tiềm năng vô hạn để tự đổi mới thúc
đẩy quá trình tạo khối u [67].
Một trong những cơ chế phát sinh ung thư được đặc biệt quan tâm hiện
nay liên quan đến “tế bào gốc ung thư” (TBGUT- cancer stem cells). Tế bào
gốc ung thư dạ dày (TBGUTDD- gastric cancer stem cells) được cho là đóng
vai trò quan trọng trong việc di căn và kháng thuốc của khối u. Các liệu pháp
chống ung thư hiện nay thường không tiêu diệt chọn lọc các tế bào ung thư.
Kết quả là các TBGUT có khả năng kháng thuốc sẽ tiếp tục tồn tại và phân
chia dẫn đến sự tái phát ung thư sau điều trị [5].
Lý thuyết về TBGUT đã làm thay đổi phương pháp trong điều trị ung
thư, đó là việc phát triển các liệu pháp nhắm trực tiếp vào TBGUT.
TBGUTDD là cơ sở cho sự hình thành ung thư dạ dày. Tế bào này bắt nguồn
từ tế bào gốc dạ dày (TBGDD) trong các mô dạ dày hoặc các tế bào gốc trung
mô tủy xương [41]. TBGUTDD là yếu tố chính gây kháng hóa trị và xạ trị của
ung thư dạ dày. Những bằng chứng đầu tiên về tế bào gốc ung thư dạ dày
được cung cấp bởi Bjerknes và Cheng năm 2002. Các tác giả đã sử dụng các
tác nhân gây đột biến hoá học để đánh dấu các tế bào biểu mô một cách ngẫu
nhiên để làm mất chức năng gen chuyển trong mô hình chuột chuyển gen
Rosa26-lacZ biểu hiện Beta-galactoside [20]. CD44 là phân tử bám dính trên
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
bề mặt TBGUTDD sớm nhất. Tiếp sau đó, tế bào ung thư cũng đã được phát
11
hiện trong các khối u phân lập trực tiếp từ bệnh nhân ung thư dạ dày bởi Lo và
cộng sự năm 2014, Nguyen và cộng sự năm 2016 [62]. Đặc biệt gần đây nhất,
Nguyen và cộng sự đã chỉ ra rằng ALDH (Aldehyde dehydrogenase) là một
marker dùng để xác định TBGUTDD ở người, đồng thời phát hiện ra rằng chính
những tế bào biểu hiện marker này đáp ứng mạnh với sự loại thải thuốc [63].
Ngay sau đó, cũng chính nhóm nghiên cứu này đã chứng minh rằng việc nhắm
đích các tế bào này bằng acid retinoic đã ức chế mạnh mẽ sự tăng trưởng của
TBGUTDD, gây biệt hóa TBGUT.
Các TBGUT không chỉ có khả năng phân chia, biệt hoá thành tất cả các
tế bào khác nhau trong khối u, làm tăng kích thước khối u mà có khả năng tạo
ra tế bào con với đủ các đặc tính của nó dựa vào đặc tính tự làm mới của loại
tế bào này. Tính tự làm mới của tế bào gốc thường cũng như TBGUT được
điều khiển bởi mạng lưới các tín hiệu phân tử như Wnt/β-catenin, Hedgehog,
Bmi-1, EGF, FGF, Src, Akt, Notch. Các tế bào gốc được phân biệt với các tế
bào khác trong cùng khối u thông qua sự biểu hiện một số marker trên bề mặt
của tế bào. Việc hiểu rõ đặc tính của các TBGUT đóng góp một phần không
nhỏ vào các liệu pháp điều trị ung thư mà ở đó các TBGUT trở thành đích
nhắm tới của liệu pháp [6].
Đối với ung thư dạ dày, các tế bào gốc ung thư được xác định lần đầu
tiên dựa vào marker bề mặt và phương pháp quần thể phụ. Năm 2002, tác giả
Bjerknes và cộng sự đã phân tích sự biểu hiện của 6 marker tế bào gốc tiềm
năng trên các dòng tế bào ung thư dạ dày và đã chỉ ra rằng, quần thể tế bào
CD44+ được phân tách bằng kỹ thuật dòng chảy tế bào FACS (Fluorescence-
activated cell sorting), các tế bào này mang các đặc tính cơ bản của tế bào gốc
ung thư như khả năng tạo các tumorsphere in vitro và hình thành khối u in
vivo [20]. Thêm vào đó, dựa trên phân tích quần thể phụ trong 5 dòng tế bào
ung thư dạ dày bằng phương pháp nhuộm Hoechst 33342, Fukada và cộng sự
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
đã chỉ ra các tế bào của một quần thể phụ chiếm tỷ lệ từ 0,02% đến 1,96% có
12
sự biểu hiện mạnh các gen vận chuyển ABC liên quan đến khả năng kháng
thuốc mà điển hình là gen MDR1 và BCPR1 kháng lại cisplatin 5-fluorouracil
và Doxorubicin. Đặc biệt, các tế bào thuộc quần thể phụ đã thể hiện hai đặc
điểm cơ bản của tế bào gốc ung thư đó là khả năng hình thành các
tumorsphere trong điều kiện in vitro và sự hình thành các khối u trong điều
kiện cấy ghép in vivo vượt trội so với các tế bào tách ra từ quần thể chính.
Đặc biệt, công bố của Nguyen và cộng sự (2017) đã lần đầu tiên xác định sự
tồn tại của các tế bào gốc ung thư dạ dày trong các dòng tế bào ung thư và
trong các khối u dạ dày phân lập từ các bệnh nhân dựa trên các sàng lọc in
vitro và in vivo [63]. Trong nghiên cứu này, nhóm nghiên cứu đã chỉ ra, tế bào
gốc không chỉ biểu hiện các marker đặc trưng như CD44, ALDH mà chúng
còn thể hiện đặc tính kháng thuốc rất rõ rệt so với quần thể tế bào không phải
là tế bào gốc ung thư.
1.2. Chu kỳ tế bào và ung thư
1.2.1. Khái quát chung về chu kỳ tế bào
Chu kỳ tế bào, hay chu kỳ phân bào, là một vòng tuần hoàn các sự kiện
xảy ra trong một tế bào từ lần phân bào này cho đến lần kế tiếp, trong đó bộ
gen và các thành phần của tế bào được nhân đôi và sau đó tế bào phân chia
làm hai tế bào con. Ở các sinh vật đơn bào (nấm men, vi khuẩn,...) một cá thể
sau khi trải qua chu kỳ phân bào tạo ra hai cá thể mới; còn ở các sinh vật đa
bào thì chu kỳ tế bào là một quá trình tối quan trọng để một hợp tử phát triển
thành một cơ thể hoàn chỉnh và để cơ thể bổ sung số lượng tế bào thay cho số
đã chết [33].
Trong các tế bào nhân sơ, chu kỳ tế bào trải qua một quá trình mang
tên là trực phân. Trong các tế bào nhân chuẩn chu kỳ tế bào bao gồm hai
giai đoạn: giai đoạn thứ nhất kỳ trung gian lúc tế bào phát triển, tích lũy vật
chất và nhân đôi DNA; giai đoạn thứ hai là nguyên phân (Mitosis - M), lúc
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
này tế bào thực thi quá trình phân chia thành hai tế bào con. Nhìn chung,
13
chi tiết của chu trình tế bào thay đổi tùy loại tế bào và tùy sinh vật, tuy
nhiên chúng có cùng những điểm chung nhất định và có cùng mục tiêu
là truyền đạt lại toàn bộ và chính xác thông tin di truyền của chúng cho các
tế bào con. Chính vì vậy, bộ gen của tế bào mẹ phải được nhân đôi một
cách chính xác và phải được chia đồng đều cho các tế bào con để mỗi tế
bào con đều nhận được bộ gen y hệt tế bào mẹ [33], [44].
Bảng 1.1. Các pha trong chu kỳ tế bào
Pha Mô tả Trạng thái Pha (viết tắt)
G0 Tĩnh lặng/ Lão hóa Gap 0 (khoảng cách 0) Trong pha này tế bào không tham gia vào chu kỳ và ngưng phân chia.
G1 Gap 1 (khoảng cách 1)
Trong pha này tế bào tăng kích thước. Điểm kiểm soát G1 điều khiển các cơ chế giúp cho tế bào chuẩn bị đầy đủ mọi thứ trong G1 rồi mới tiến tới pha S.
trung S Tổng hợp (Synthesis) Sự nhân đôi DNA và nhiễm sắc thể (NST) xảy ra trong pha này. Kỳ gian
G2 Gap 2 (khoảng cách 2)
Trong pha G2 tế bào tiếp tục sinh trưởng. Điểm kiểm soát G2 điều khiển các cơ chế giúp cho tế bào chuẩn bị đầy đủ mọi thứ trong G2 rồi mới tiến tới phân chia trong nguyên phân.
Phân bào M Nguyên phân (Mitosis)
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Tế bào ngừng sinh trưởng và toàn bộ năng lượng được tập trung vào việc phân chia tế bào thành hai tế bào con một cách có trật tự. Ở giữa giai đoạn nguyên phân có một điểm kiểm soát ở kỳ giữa nhằm đảm bảo tế bào đã sẵn sàng hoàn tất quá trình phân bào.
14
Các pha trong chu kỳ tế bào (Bảng 1.1): Chu kỳ tế bào có thể được chia
thành các pha sau: G1, S, G2 (các pha G1, S, G2 được gộp lại thành kỳ trung
gian) và pha nguyên phân, hay pha M. Bản thân pha M bao gồm hai quá trình
liên quan chặt chẽ với nhau: quá trình nguyên phân trong đó nhiễm sắc
thể của tế bào mẹ được chia tách ra làm hai phần bằng nhau và quá trình phân
chia tế bào chất (Cytokinesis) trong đó tế bào chất của tế bào mẹ tách làm hai
phần bằng nhau và hình thành hai tế bào con. Việc kích hoạt mỗi pha phụ
thuộc vào sự tiến triển đúng cách của pha trước. Tế bào nếu có chu kỳ bị tạm
thời ngưng trệ hay bị đảo ngược thì được xem như rơi vào một trạng thái tĩnh
lặng gọi là pha G0 [33], [44].
1.2.2. Rối loạn chu kỳ tế bào và ung thư
Điểm kiểm soát chu kỳ tế bào là các cơ chế kiểm soát trong tế bào có
chức năng đảm bảo sự chính xác của quá trình phân bào trong các tế bào sinh
vật nhân chuẩn. Các điểm kiểm soát này sẽ xác minh xem sự tiến triển của
các pha trong chu kỳ tế bào có được hoàn tất một cách chính xác hay không
trước khi bước sang pha tiếp theo. Nếu cơ chế kiểm soát phát hiện ra các sai
sót, các vấn đề xảy ra trong tế bào hoặc ngoài tế bào, chúng sẽ chặn chu kỳ tế
bào ngay tại điểm kiểm soát và không cho tế bào tiến vào giai đoạn tiếp theo
của chu kỳ trước khi các vấn đề được giải quyết. Nhiều điểm kiểm soát như
vậy đã được nhận diện, trong đó một số điểm kiểm soát chưa được hiểu rõ
bằng các điểm khác [33]. Điểm kiểm soát chu kỳ tế bào được tế bào sử dụng
nhằm giám sát và điều tiết diễn biến chu kỳ tế bào [26]. Điểm kiểm soát có
vai trò ngăn chặn chu kỳ tế bào tại một số điểm nhất định, nhờ đó tế bào có
thể kiểm định lại một số diễn biến và quá trình cần thiết và sửa chữa những
chỗ sai hỏng của DNA. Tế bào không thể thực hiện pha kế tiếp của chu kỳ
cho đến khi nó thỏa mãn các yêu cầu mà điểm kiểm soát đặt ra.
Một số điểm kiểm soát được thiết kế để đảm bảo các DNA bị sai hỏng
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
hay thiếu sót sẽ không được truyền cho các tế bào con cháu. Hai điểm kiểm
15
soát như vậy tồn tại là điểm kiểm soát G1/S và điểm kiểm soát G2/M. Sự
chuyển tiếp G1/S là một bước hạn chế bởi tỉ lệ trong chu kỳ tế bào và cũng
được biết đến với cái tên điểm giới hạn (trong tế bào động vật) hay điểm bắt
đầu (trong nấm men) [33], [76]. Một mô hình về phản ứng của chu kỳ tế bào
trước các sai hổng của DNA đã được đề xuất, mang tên là điểm kiểm soát sau
nhân đôi DNA. Protein P53 đóng một vai trò quan trọng trong việc mở đầu
các cơ chế kiểm soát chu kỳ tế bào ở cả hai điểm kiểm soát G1/S và G2/M.
Vai trò trong việc hình thành khối u
Những bất thường trong việc điều hòa chu kỳ tế bào có thể dẫn tới việc
hình thành các khối u. Một số gen như các gen ức chế chu kỳ tế bào
(RB, P53...) khi bị đột biến có thể khiến tế bào sinh sản không kiểm soát và
hình thành khối u (hình 1.2). Mặc dù chu kỳ tế bào khối u bằng hay dài hơn tế
bào bình thường, trong các khối u tỉ lệ tế bào trong trạng thái sẵn sàng phân
bào so với các tế bào ở trạng thái pha G0 cao hơn nhiều so với các tế bào bình
thường; trong khi đó các tế bào bị chết rụng hay già lão vẫn không thay đổi).
Chính vì thế mà tính tổng cộng thì số tế bào khối u sẽ từ từ tăng dần lên [68].
Những tế bào đang trải qua chu kỳ một cách tích cực là mục tiêu trong
các liệu pháp chữa bệnh ung thư vì các DNA của chúng bộc lộ tương đối rõ
rệt trong quá trình phân bào và vì vậy chúng dễ bị tổn thương bởi các
loại thuốc hay tia bức xạ. Việc này được tận dụng tối đa trong việc điều trị
ung thư bởi một phương pháp mang tên là debulking, lúc này một số lớn các
tế bào khối u bị loại bỏ và điều này khiến một số lớn tế bào khối u còn trong
pha G0 bị chuyển sang pha G1 (do dinh dưỡng, ôxi, nhân tố sinh trưởng,... dồi
dào hơn vì các tế bào giảm đi). Các tế bào này nhanh chóng bị tiêu diệt bởi tia
bức xạ hay thuốc ngay khi mới chớm thực thi chu kỳ tế bào [82]. Nhìn chung,
các tế bào dễ bị tổn thương nhất vào cuối pha M và vào pha G2, còn sức
chống chịu đối với bức xạ cao nhất ở cuối pha S. Đối với những tế bào có chu
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
kỳ dài và pha G1 dài, chúng cũng có sức kháng cự tốt ở cuối pha G1. Kiểu đề
16
kháng này liên quan đến mức độ các hợp chất sulfhydryl trong tế bào.
Sulfhydryl có tác dụng kháng bức xạ và có mức độ cao nhất ở pha S và thấp
nhất ở gần pha nguyên phân. Những sự khác biệt này chủ yếu do khác biệt về
thời gian ở pha G1, còn các pha M và S thì ít thay đổi.
Hình 1.2. Cơ chế phân chia của tế bào ung thư [45]
1.2.3. Các gen kiểm soát chu kỳ tế bào
P21 có khả năng ức chế sự phát triển của tế bào, vì đột biến gen của P21
dẫn đến tăng khả năng hình thành khối u. Tuy nhiên, mất P27 dẫn đến một
kiểu hình rõ rệt hơn và bằng chứng mạnh mẽ cho thấy rằng P27 thực sự dẫn
đến tăng tỷ lệ mắc một số bệnh ung thư. P21 đóng vai trò là tác nhân chính
của nhiều con đường ức chế khối u để thúc đẩy các hoạt động chống tăng sinh
độc lập với con đường ức chế khối u P53. Nhưng trong các nghiên cứu gần
đây cho thấy, trong một số điều kiện nhất định, P21 có thể thúc đẩy sự tăng
sinh tế bào và gây ung thư. Do đó, P21 có thể hoạt động như một chất ức chế
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
khối u hoặc là một gen gây ung thư [72]. P21 là chất ức chế quá trình tái bản
17
DNA và ức chế các cyclin-dependent kinases từ đó khiến cho tế bào rơi vào
trạng thái dừng chu kỳ tế bào. Ở nhiều dòng tế bào ung thư sự biểu hiện tăng
cường P21 thúc đẩy tế bào đi vào trạng thái nghỉ vĩnh viễn như một tế bào trải
qua quá trình lão hóa [31].
CCNE1 là gen mã hóa cho protein Cyclin-E1 đặc hiệu G1/S [46]. Protein
được mã hóa bởi gen này thuộc họ cyclin, được đặc trưng bởi tính tuần hoàn
mạnh mẽ của sự phong phú protein trong chu kỳ tế bào. Cyclins có chức năng
điều tiết CDK(Cyclin-dependent kinases). Cyclin này tạo thành một phức hợp
có chức năng như một tiểu đơn vị điều tiết của CDK2, có hoạt động cần thiết
cho quá trình chuyển đổi G1/S của chu kỳ tế bào. Protein này tích lũy ở ranh
giới pha G1-S và bị suy giảm khi các tế bào tiến triển qua pha S. Sự biểu hiện
quá mức của gen này đã được quan sát thấy ở nhiều khối u, dẫn đến mất ổn
định nhiễm sắc thể, và do đó có thể góp phần gây ra khối u. Năm 2019, Chao
Zhang và cộng sự đã chứng minh rằng CCNE1 (cyclin E) được coi là có liên
quan đến sự phát triển của các loại khối u khác nhau, và nó có vai trò quan
trọng trong ung thư biểu mô dạ dày (GC). Họ đã kiểm tra biểu hiện của
CCNE1 trong các tế bào GES-1 niêm mạc dạ dày và năm dòng tế bào GC.
CCNE1 đã được sử dụng để đánh giá hiệu quả của nó đối với sự tăng sinh và
chu kỳ tế bào trong các tế bào MGC-803 và NCI-N87. Kết quả cho thấy sự
điều chỉnh tăng CCNE1 chủ yếu được thể hiện trong các mô tế bào và các
dòng tế bào GC, cũng liên quan đến giai đoạn di căn hạch (TNM) và xâm lấn
bạch huyết [25]. Trong các tế bào ung thư buồng trứng, biểu hiện CCNE1
kích thích tăng sinh tế bào và tăng sự hình thành khuẩn lạc. Sự biểu hiện quá
mức CCNE1 liên quan đến khuếch đại gen CCNE1 có liên quan đến sự phát
triển của kháng hóa chất trong ung thư buồng trứng. Vì các khối u buồng
trứng có mức CCNE1 tăng cao thường biểu hiện biểu hiện Cdk2 cao hơn và
hầu hết các tác dụng thúc đẩy khối u liên quan đến CCNE1 cần có sự tham
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
gia của Cdk2 [47].
18
P27 được coi là một chất ức chế khối u vì chức năng của nó như là một
bộ điều chỉnh chu kỳ tế bào. Trong các bệnh ung thư, nó thường bị bất hoạt
thông qua quá trình tổng hợp bị suy yếu, suy thoái cấp tốc hoặc sai lệch vị
trí. Những hành động này để tăng tốc độ phân giải protein P27 và cho phép tế
bào ung thư trải qua quá trình phân chia nhanh chóng và tăng sinh không
kiểm soát [23]. Trong hầu hết các bệnh ung thư, mức độ hạt nhân P27 giảm
có liên quan đến việc tăng kích thước khối u, tăng khối u và xu hướng di căn
cao hơn [64]. P27 là một phân tử phức tạp, có nhiều chức năng được điều hòa
thông qua rất nhiều tương tác protein và sửa đổi sau dịch mã. Một số nghiên
cứu đã phân loại P27 như một chất ức chế khối u giả định: (1) nó hoạt động
như một bộ điều chỉnh tiêu cực của chu kỳ tế bào; (2) sự biểu hiện quá mức
của nó ngăn chặn sự phát triển của tế bào trong một số loại tế bào. Tuy nhiên,
P27 là một chất ức chế khối u không điển hình vì trái ngược với các thuốc ức
chế khối u nổi tiếng khác như P53 và RB1, nó không bị đột biến trong ung
thư ở người [64].
Năm 2018, Victoria J. Gennaro và cộng sự cũng đã nghiên cứu về khả
năng kiểm soát CCND1 bởi tiểu đơn vị SAGA xúc tác USP22 (Ubiquitin
specific peptidase 22) là điều cần thiết cho sự phát triển chu kỳ tế bào thông
qua G1 trong các tế bào ung thư. CCND1 là chất ức chế cyclin. Họ đã chứng
minh rằng kiểm soát CCND1 là một cơ chế chính mà USP22 làm trung gian
trong tiến trình chu kỳ tế bào. Về mặt chức năng, sự biểu hiện quá mức này
của USP22 góp phần tích cực vào sự hình thành khối u, vì sự suy giảm
USP22 ngăn chặn sự tiến triển của chu trình tế bào ung thư trong ống nghiệm
và ức chế sự tiến triển của khối u trong các mô hình động vật của phổi, vú,
bàng quang, buồng trứng và ung thư gan. USP22 và CCND1 tương quan
trong các mẫu ung thư phổi và ung thư đại trực tràng của bệnh nhân và các
nghiên cứu tiền lâm sàng của chúng tôi chỉ ra rằng việc nhắm mục tiêu
USP22 kết hợp với các thuốc ức chế CDK có thể đưa ra cách tiếp cận để điều
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
trị bệnh nhân ung thư có khối u biểu hiện CCND1 tăng [77].
19
Kháng nguyên nhân tế bào tăng sinh PCNA (Proliferating cell nuclear
antigen), là một protein phụ cho DNA polymerase delta điều chỉnh sự sao
chép và sửa chữa DNA, đã được báo cáo là đóng một vai trò quan trọng trong
việc điều chỉnh quá trình apoptosis. Liu XH và cộng sự đã chỉ ra rằng, GSK3β
đã tương tác với PCNA trong các tế bào ung thư biểu mô tuyến H1299.
Nghiên cứu này cũng chỉ ra rằng, sự tương tác của chúng có thể được tăng
cường trong vòng 3 giờ đầu sau khi chiếu xạ UVC và giảm dần theo thời gian.
Sự biểu hiện quá mức của protein PCNA làm giảm quá trình phosphoryl hóa
GSK3β Ser9, trong khi đó, việc giảm PCNA bằng cách sử dụng RNA can
thiệp nhỏ (siRNA) đã làm tăng sự ức chế phosphorylated GSK3 Ser, bị ức chế
bởi phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) [48].
1.3. Giới thiệu chung về cây Lá khôi
1.3.1. Phân loại và đặc điểm
Họ Đơn nem (Myrsinaceae) là một họ thực vật khá lớn, bao gồm 50 chi
và khoảng 1.400 loài, được phân bố rộng rãi trên thế giới, nhất là ở các nước
có khí hậu ôn đới và nhiệt đới. Trong đó, chi Cơm nguội (Ardisia) có khoảng
400-500 loài [18]. Trên thế giới chi Ardisia là một chi lớn thuộc họ
Myrsinaceae, có khoảng 500 loài, phân bố phần lớn ở vùng nhiệt đới châu
Mỹ, châu Á, số ít ở châu Úc và các đảo ở Thái Bình Dương. Ở Việt Nam chi
Ardisia có khoảng 101 loài. Dạng sống chủ yếu của các loài thuộc chi này là
cây gỗ nhỏ, cây bụi hoặc nửa bụi gần với dạng cây thân thảo [9].
Cây Lá khôi thuộc chi Ardisia hay còn gọi là Lài sơn, cây Lá khôi có tên
khoa học là Ardisia gigantifolia Stapf. [2]. Trong cuốn “Thực vật chí Việt
Nam” của Trần Thị Kim Liên, tập 4 (trang 173) có mô tả như sau: Cây Lá
khôi là cây bụi lớn hoặc nửa bụi, cao khoảng 1-2(3) m, có thân rễ bò dày,
phần thân đứng thẳng có đường kính khoảng 1cm, thường không phân cành,
không có lông, trừ thân rất non có lông mềm thưa. Lá thường tập trung ở đầu
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
thân, phiến mỏng hình bầu dục hoặc hình mác dạng trứng, 24-48(60) x 7-
20
17(19) cm, chóp lá tù có mũi nhọn, gốc hình nêm và men xuống thành cánh ở
cuống lá, mép khía răng cưa nhỏ nhọn dày đặc, hai mặt không có lông hoặc
có lông mềm nhỏ thưa trên gân ở mặt dưới, có điểm tuyến lồi thưa thớt, nhiều
hơn ở gần mép lá, gân bên khoảng 15-20 đôi, hướng lên, cuống dài 2-4cm.
Cụm hoa hình chùm tán ở nách lá, dài 18-30(35) cm, có lông mềm nhỏ, mỗi
tán có 9-15 hoa; cuống hoa dài 1-1,5 cm; lá bắc và lá bắc con hình giải, có
lông nhỏ và điểm tuyến. Hoa màu hồng hoặc trắng. Lá đài hơi hợp ở gốc, hình
tam giác hoặc mác, đầu nhọn dài 1,5-2 mm, có điểm tuyến và có lông quanh
mép. Cánh hoa hình trứng dài 4-5 mm, có điểm tuyến. Nhị dài bằng 2/3 cánh
hoa, bao phấn hình trứng. Bầu hình cầu, nhẵn hoặc có lông rất nhỏ, vòi nhụy
dài gần bằng cánh hoa, noãn nhiều, 1 vòng. Quả hình cầu đường kính khoảng
6 mm, màu hồng có gân tuyến và điểm tuyến [9].
Theo tác giả Võ Văn Chi [2] và Trần Thị Kim Liên [9], nhiều loài Ardisia
ở Việt Nam được dân gian sử dụng làm thuốc được phân bố ở Sơn La, Bắc
Giang, Hà Nội (Ba Vì), Hà Nam, Ninh Bình, Nghệ An, Quảng Trị, Thừa Thiên
- Huế, Kon Tum. Cây ra hoa tháng 3-6, có quả tháng 11-12. Mọc ở rừng thưa,
rừng rậm, sườn đồi, thung lung, khe núi, bờ suối nơi ẩm có bóng râm.
1.3.2. Thành phần hóa học của cây Lá khôi
Loài Ardisia gigantifolia có phần thân, rễ đã được sử dụng từ lâu để điều
trị 35 các bệnh thấp khớp, đau cơ, đau xương hay đau do chấn thương. Bốn
tritecpenoid saponin kiểu oleane được phân lập từ thân rễ loài này được thử
hoạt tính gây độc tế bào, kết quả cho thấy 3 trong 4 hợp chất thể hiện hoạt tính
gây độc tế bào lên các dòng tế bào ung thư thử nghiệm là NCI-H460, SF-268,
MCF-7 và HepG2 [83]. Một hợp chất có khung coumarin được phân lập từ
phần thân rễ cũng cho thấy hoạt tính gây độc tế bào mạnh lên các dòng tế bào
ung thư PC-3 và A549 [75]. Một dẫn xuất resorcinol được phân lập từ phần
thân rễ chỉ ra hoạt tính gây độc tế bào mạnh lên các dòng tế bào PC-3, EMT6,
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
A549, HeLa, RM-1 và SGC7901 [61].
21
Bằng các phản ứng hóa học đặc trưng đã xác định được nhóm chất chính
trong lá cây Lá khôi là tannin pyrogallic. Hàm lượng polyphenol tổng số trong
cao chiết nước và cao chiết cồn 80% từ lá cây Lá khôi lần lượt là 5,03±0,05%
và 8,09±0,11%, trong khi hàm lượng tannin tổng số tương ứng là 0,85±0,04%
và 0,52±0,01%. Cao chiết nước và chiết cồn 80% từ lá cây Lá khôi gây độc yếu
trên các dòng tế bào ung thư thử nghiệm SK-LU-1, MCF-7, Hela, AGS, và SK-
Mel-2. Cao chiết nước Lá khôi thể hiện tác dụng dọn gốc tự do SOD và ức chế
xanthin oxidase trung bình yếu trong khi cao chiết cồn lá cây Lá khôi không
thể hiện tác dụng này ở liều thử nghiệm trên in vitro [12].
Theo tác giả Nguyễn Hoàng Anh và cộng sự cũng đã nghiên cứu về
thành phần hóa học của hai loài Ardisia silvestris và Ardisia gigantifolia vào
năm 1996, trong đó công bố đã tìm thấy hai dẫn xuất resocinol là 2-methyl-5-
(Z-nonadec-14-enyl)resorcinol và 5-(Z-nonadec14-enyl)resorcinol. Ngoài ra,
từ lá của loài A. silvestris, một số sterol như 38 stigmasterol, spinasterol là
hàm lượng chính, còn có 24-methylenecholesterol, stigmast-22-en-3β-ol, 22-
dihydrospinasterol cùng một số các hợp chất tritecpen khác lanost-8-en-3β-ol,
taraxerol, lano-sterol, β-amyrin, 24-methylenelanost-8-en3β-ol và 24-
methylenecycloartanol đã được tìm thấy [39].
Bốn hợp chất triterpenoid saponin mới (1-4) đã được phân lập từ thân rễ
của Ardisia gigantifolia. Các cấu trúc của chúng được làm sáng tỏ bằng
phương pháp nghiên cứu quang phổ C-NMR, bao gồm kỹ thuật 2D-NMR. Các
hoạt động gây độc tế bào của saponin 1-4 được báo cáo đối với ba dòng tế bào
ung thư ở người, gồm tế bào ung thư cổ tử cung Hela, các tế bào ung thư bàng
quang EJ và tế bào ung thư dạ dày BCG-823 ở người [57].
Một saponin triterpenoid mới, có tên 3-O-β-d-glucopyranosyl- (1 → 3)
-β-d-xylopyranosyl- (1 → 2) - [α-l-rhamnopyranosyl- (1 → 3)] -- d-
glucopyranosyl- (1 → 4) - [β-d-glucopyranosyl- (1 → 2)] - α-l-
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
arabinopyranosyl-3β, 16α, 28,30-tetrahydroxy-olean-12-ene (1) với bốn
22
triterpenoids đã biết (2-5), được phân lập từ thân rễ của Ardisia gigantifolia.
Cấu trúc của chúng đã được làm sáng tỏ bằng phương pháp quang phổ. Các
hợp chất 1-4 cho thấy hoạt động gây độc tế bào chống lại các dòng tế bào
Hela, EJ, BCG và HepG-2. Tỷ lệ tế bào apoptotic sớm sau khi điều trị bằng
một saponin triterpenoid đã tăng đáng kể so với các tế bào đối chứng (p
<0,05) [54].
Mười bảy 13,28-epoxy triterpenoid saponin thu được từ Ardisia
gigantifolia đã được đánh giá các hoạt động chống tăng sinh của chúng trên các
tế bào MCF-7. Phân tích mối quan hệ cấu trúc - hoạt động chỉ ra rằng nhóm
CH3 tại C-30, bốn đơn vị sacaride có L-rhamnose tại R6 trong các đơn vị
đường rất quan trọng đối với hoạt động gây độc tế bào trên MCF-7. Các hợp
chất 1, 2, 6, 7, 12 và 14 đã được chọn để xác định hoạt động chống tăng sinh
trên ba dòng tế bào ung thư vú khác (T47D, MDA-MB-231 và SK-BR-3) [52].
Trong quá trình phân lập định hướng hoạt tính kháng lao của dịch chiết
CHCl3 từ phần lá và thân của loài Ardisia gigantifolia, đã phân lập được hai
dẫn xuất alkylresorcinol là 5- (8Z-heptadecenyl) resorcinol (1) và 5- (8Z-
pentadecenyl) resorcinol (2) cùng với đó là 15 dẫn xuất khác đã được tổng
hợp từ các hợp chất tự nhiên. Những hợp chất này (gồm cả tách chiết từ thiên
nhiên và tổng hợp) sau đó được đánh giá hoạt tính chống lao thực hiện trên vi
khuẩn lao Mycobacterium H37 RV, một loại vi khuẩn gây ra bệnh lao ở
người. Kết quả hai dẫn xuất resorcinol (1) và (2) thể hiện hoạt tính chống lao
với các giá trị MIC lần lượt là 34,4; 79,2 μM trong phương pháp MABA và
91,7; 168,3 μM trong phương pháp Lora [14].
1.3.3. Các nghiên cứu về tác dụng của cây Lá khôi trong điều trị ung thư
Theo nghiên cứu của Mu L và cộng sự năm 2014 thì chiết xuất etanolic
của rễ loài Ardisia gigantifolia (AGB-5) (Trung Quốc), có thể ảnh hưởng đến
sự tăng sinh của tế bào ung thư biểu mô tuyến vú ở người (MCF-7) trong ống
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
nghiệm và khám phá tế bào ung thư dưới tác dụng của AGB-5 trên chuột
23
được ghép với các tế bào MCF-7. Trong một mô hình in vivo, AGB-5 đã giảm
thể tích khối u, mang lại tế bào hồng cầu và tế bào bạch cầu gần bằng giá trị
bình thường, tăng cường superoxide disutase và catalase của chuột mang
MCF-7. Đây là nghiên cứu đầu tiên xác minh hoạt động chống ung thư của A.
gigantifolia in vivo. Kết quả cho thấy, AGB-5 có thể có tác dụng có lợi đối
với ung thư biểu mô tuyến vú ở người [53].
AG36 là sản phẩm biến đổi sinh học của triterpenoid saponin từ Ardisia
gigantifolia. Năm 2017, tác giả Li-Hua Mu và cộng sự đã chỉ ra hoạt động chống
ung thư và các cơ chế phân tử cơ bản của AG36 chống lại các tế bào ung thư vú
MCF-7, MDA-MB và SK-BR-3 ở người. Các nghiên cứu in vivo cho thấy AG36
ức chế đáng kể sự phát triển của khối u MCF-7 ở chuột so với đối chứng. Cụ thể,
AG36 ức chế sự tăng sinh tế bào MCF-7, MDA-MB-SK và SK-BR-3. Vì vậy,
AG36 có thể là một tác nhân điều trị ung thư vú tiềm năng [51].
Hợp chất 1, một saponin triterpenoid từ Ardisia gigantifolia cho thấy
hoạt động chống khối u tiềm năng, gồm có 3 dẫn xuất (2-4). Trong số đó, hợp
chất 2 và 3 là hợp chất mới. Các hợp chất 3 được đánh giá về khả năng gây
độc tế bào đối với ung thư biểu mô tế bào gan và tế bào gan bình thường. Hợp
chất 3 cho thấy độc tính tế bào tốt hơn đối với các dòng tế bào Bel-7402 và
HepG2 và độc tính tế bào yếu hơn nhiều so với tế bào L02 gan bình thường so
với kiểm soát dương tính [58].
Ba triterpenoid saponin mới, 1- 3, cùng với hai saponin được biết đến, 4
và 5, đã được phân lập từ thân rễ của Ardisia gigantifolia. Kết cấu của chúng
được làm sáng tỏ bằng các nghiên cứu quang phổ NMR 1D và 2D. Saponin 1,
2, 4, và 5 có tính độc tế bào đáng kể đối với bốn dòng tế bào ung thư của
người, như tế bào ung thư cổ tử cung Hela, tế bào u ác tính EJ, tế bào gan
hepatoma và các tế bào ung thư dạ dày BCG ở người [56].
Hợp chất 1, một saponin triterpenoid từ Ardisia gigantifolia cho thấy
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
hoạt động chống khối u tiềm năng, đã bị thủy phân thành hai dẫn xuất
24
deglycosyl (2 và 3) bởi Alternaria Alternata AS 3.6872. Cả hai dẫn xuất này
là các hợp chất mới. Cấu trúc của chúng đã được làm rõ trên cơ sở dữ liệu
quang phổ xoay 1D, 2D NMR, HR-ESI-MS và quang học. Các hợp chất 1-3
được đánh giá về khả năng gây độc tế bào chống lại ung thư tế bào gan và tế
bào gan bình thường [59].
Mười ba 13,28-epoxy triterpenoid saponin đã được phân lập từ cây Lá
khôi và một saponin có tiềm năng chống khối u đã được methyl hóa bởi
H2SO4 để tạo ra bốn hợp chất mới. Phân tích mối quan hệ cấu trúc và hoạt
động chỉ ra rằng sự kết hợp của nhóm O tại C-16, L-rhamnose tại R (5) và
nhóm acetyl ở OH-6 của D-glucose dẫn đến tăng đáng kể hoạt tính gây độc
trên A549 và HCT-8 nhưng làm giảm đáng kể hoạt tính gây độc tế bào trên
các tế bào Bel-7402 [55].
Mức độ ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên apoptosis 3 dòng tế bào
(AGS, MKN45, MKN74) khác nhau, cụ thể như sau: Tỷ lệ apoptosis ở dòng
AGS là 11,5 ± 5,2% cao nhất trong 3 dòng, tiếp theo là dòng MKN45 với tỷ
lệ 6,5 ± 0,5%; thấp nhất ở dòng MKN74 với tỷ lệ 3,3 ± 1,1%. Như vậy, mặc
dù ở nồng độ 100 µg là một nồng độ có khả năng ức chế 70 – 80% khả năng
sinh trưởng của tế bào nhưng khả năng cảm ứng apoptosis đối với cả 3 dòng
tế bào chỉ đạt từ 3,3 – 11,5%; đây là một tỷ lệ rất thấp so với một số nghiên
cứu khác. Kết quả này chỉ ra rằng dịch chiết Lá khôi là ít độc cho các tế bào
và khả năng ức chế cao sự phân chia nhưng ít gây ra apoptosis, đó có thể là do
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
một cơ chế sinh học khác như sự biệt hóa tế bào gốc, sự già hóa [7].
25
CHƯƠNG 2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1. Vật liệu nghiên cứu
Dòng tế bào ung thư dạ dày MKN45, do Phòng thí nghiệm Inserm
U1053 - Viện Sức khỏe và Nghiên cứu Y học Quốc gia - Cộng hòa Pháp cung
cấp, được lưu trữ tại phòng Thí nghiệm Y - Sinh - Khoa Công nghệ Sinh học -
Trường Đại Khoa học - Đại học Thái Nguyên.
Cây Lá khôi (Ardisia gigantifolia) thuộc chi Ardisia họ Đơn nem
(Myrsinaceae) thu thập tại huyện Định Hóa, tỉnh Thái Nguyên, được bảo quản
tại phòng Thí nghiệm Y - Sinh - Khoa Công nghệ Sinh học - Trường Đại
Khoa học - Đại học Thái Nguyên.
2.2. Hóa chất và thiết bị nghiên cứu
Môi trường nuôi cấy tế bào RPMI 1640 và DMEM-F12 (Invitrogen),
huyết thanh bò (Invitrogen), Trypsin, Kháng sinh Ampicilin/Streptomycin
(Invitrogen), DMSO, MTT và propidium iodide (PI) (Sigma) và các Primer
do Quiagen cung cấp.
Trang thiết bị nghiên cứu: Kính hiển vi đảo ngược Nikon Eclipe 2 (Nhật
Bản); Kính hiển huỳnh quang Olympus (Nhật Bản); Máy đo quang phổ
SPECTROstar Nano – BMG Labtech (Đức); Tủ nuôi cấy tế bào ổn nhiệt CO2
(Thermo Fisher Scienetific) và các thiết bị phụ trợ khác.
2.3. Địa điểm và thời gian nghiên cứu
Địa điểm nghiên cứu: Phòng Thí nghiệm Y - Sinh - Khoa Công nghệ
Sinh học - Trường Đại Khoa học - Đại học Thái Nguyên.
Thời gian nghiên cứu: Từ tháng 05/2018 đến tháng 07/2019.
2.4. Phương pháp nghiên cứu
2.4.1. Phương pháp thu thập và xác định tên khoa học của cây Lá khôi
Sử dụng phương pháp thu thập mẫu cây Lá khôi theo Nguyễn Nghĩa
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Thìn (2007) [3].
26
Xác định tên khoa học theo phương pháp chuyên gia, kết hợp với cuốn
“Thực vật chí Việt Nam” tập 4, họ Đơn nem (Myrsinaceae) của Trần Thị Kim
Liên [9].
2.4.2. Phương pháp thu dịch chiết cây Lá khôi
300 gam mẫu lá của Lá khôi được thu nhận, rửa sạch, sấy khô ở nhiệt
độ 42°C trong 48h. Tiếp theo, mẫu lá được nghiền nhỏ bằng chày cối sứ thành
bột mịn. 15 gam bột thu được sẽ được cho vào ống Falcon thể tích 50ml. Để
chiết rút dịch chiết tổng số, 30ml Ethanol tuyệt đối được bổ sung vào ống
Falcon chứa 15 gam bột lá và được lắc 200 rpm/ phút trong 48h. Dịch chiết
thu được được lọc bằng giấy lọc Whatman, sau đó được làm khô trong tủ sấy
ở nhiệt độ 50°C trong 48h. Cặn thu được sau bay hơi sẽ được sử dụng cho các
thí nghiệm tiếp theo.
2.4.3. Phương pháp nuôi cấy tế bào 2D
Dòng tế bào ung thư dạ dày MKN45 được nuôi cấy trong điều kiện nuôi
cấy bám dính (2D) trong môi trường DMEM/F12 Glutamax có bổ sung 10%
huyết thanh bò (FBS) và 1% hỗn hợp kháng sinh Ampicillin/Streptomycin (P/S), trong điều kiện 37oC, 5% CO2. 100.000 tế bào ung thư dạ dày dòng MKN45 được nuôi cấy trong hộp nuôi cấy diện tích 75cm2, trong môi trường
nuôi cấy RPMI 1640 (Invitrogen) bổ sung 10% huyết thanh bò và kháng sinh
1% Penicillin/Streptomycin.
Môi trường nuôi cấy được thay ngày một lần bằng một môi trường nuôi
cấy mới. Sau 5 ngày nuôi cấy, các tế bào được xử lý với Trypsine 0,05%
trong 3 phút. Tế bào được thu lại bằng ly tâm 1.300 rpm/phút trong 5 phút và
được cấy chuyển sang một bình nuôi cấy mới. Tế bào sống, chết được đếm
dưới kinh hiển vi đảo ngược Nikon Eclipe 2, sử dụng Trypan blue làm thuốc
nhuộm cho tế bào chết.
2.4.4. Phương pháp nuôi cấy tế bào 3D
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Nuôi cấy các tế bào ung thư dạ dày MKN45 với mật độ 2.000 tế bào/giếng nuôi cấy có diện tích 3,8 cm2, bề mặt không bám dính (3D) để hình
27
thành nên tumorsphere (khối tế bào ung thư hình cầu). Sử dụng môi trường
DMEMF12/Glutamax có bổ sung 1% Ampicillin/Streptomycin, yếu tố tăng
trưởng biểu mô EGF 20 ng/ml, yếu tố tăng trưởng thượng bì FGF 20ng/ml, 0,3% Glucose, 5µg/ml Insulin ở 370C, 5% CO2.
2.4.5. Phương pháp phân tích chu kỳ tế bào bằng Flow cytometry
2x105 tế bào của dòng MKN45 được nuôi cấy trên đĩa loại 12 giếng. Sau
24 giờ, tế bào được xử lý bằng môi trường nuôi cấy chứa dịch chiết Lá khôi ở
nồng độ 75 µg/ml. Các giếng đối chứng không bổ sung dịch chiết Lá khôi.
Thời gian xử lý là 48 giờ trong điều kiện 370C, 5% CO2. Tiếp theo, các tế bào
được tách khỏi bề mặt đĩa bằng cách xử lý với trysin/EDTA và được thu lại
bằng ly tâm 1.500 rpm/phút trong 3 phút và được cố định trong ethanol 75% ở
-20°C qua đêm. Tiếp theo, tế bào được nhuộm với dung dịch Fluorochrome
(0,1% Sodium citrate (wt/v); 0,1% Triton X-100 (v/v), 50 mg l-1 PI trong
nước khử ion vô trùng) trong thời gian 2 giờ ở 40C trước khi phân tích bằng
hệ thống Flow cytometry BD-Accuri C6 plus (BD-Bioscinces). Kết quả dữ
liệu được phân tích bằng phần mềm chuyên dụng cho hệ thống BD-Accuri C6
plus.
2.4.6. Phương pháp phân tích miễn dịch huỳnh quang
Các tumorsphere sau 5 ngày nuôi cấy được thu nhận bằng ly tâm 1.300
rpm trong 3 phút và rửa 2 lần với đệm PBS 1X. Nhuộm tế bào lần lượt với
kháng thể 1 là kháng thể đơn dòng chuột kháng protein P21 của người được
cung cấp bởi Santa Cruz, tỷ lệ 1:500 ở 37ºC trong 45 phút và kháng thể 2
kháng IgG của chuột gắn chất phát quang Alexa Fluor 488 do Thermo
Scientific cung cấp, nồng độ 1:2.000 ở 37ºC trong 20 phút. Rửa tế bào 2 lần
với PBS 1X bằng phương pháp li tâm, ở lần rửa thứ 2 tế bào được rửa trong
đệm PBS chứa chất nhuộm nhân tế bào DAPI (4,6-Diamidino-2-phenylindole
do Sigma cung cấp) nồng độ 10µg/ml. Các tế bào sau khi được ủ với kháng
thể sẽ được đặt trên lamen và được quan sát, chụp ảnh dưới kính hiển vi
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
huỳnh quang NIKON ở độ phóng đại 200 lần với phần mềm chuyên dụng.
28
2.4.7. Phương pháp tách chiết RNA tổng số và tổng hợp cDNA
RNA tổng số của tế bào MKN45 được tách chiết bằng Trizol theo hướng
dẫn của nhà sản xuất (Invitrogen). Tế bào nuôi cấy trên đĩa 6 giếng được bổ
sung 1.000 µl Trizol, dùng pipette 1ml mix nhiều lần để tách tế bào ra khỏi bề
mặt đĩa. Ủ tế bào ở nhiệt độ phòng trong 5 phút, sau đó ly tâm 12.000 rpm
trong 10 phút ở 4ºC. Chuyển dịch nổi sang ống eppendorf mới. Bổ sung 2ml
Choloroform, vontex mẫu trong 15 giây và ủ ở nhiệt độ phòng trong 3 phút.
Ly tâm 10.000 rpm/phút trong 15 phút ở 4ºC, lặp lại 2 lần. Làm khô RNA
trong 5 – 10 phút và bổ sung 100 µl nước khử ion. Đo quang phổ tại các bước
sóng 260/280 nm bằng máy đo quang phổ NanoDrop. Sử dụng 1µg RNA để
tạo cDNA bằng Quantitect Reverse Transcriptase (RT) kit (do Quiagen cung
cấp) theo hướng dẫn của nhà sản xuất.
2.4.8. Phương pháp phân tích biểu hiện gen bằng Realtime PCR
Phân tích Realtime PCR sử dụng 20ng cDNA cho mỗi phản ứng PCR
với tổng thể tích là 20 µl với chất phát huỳnh quang SYBR Green qPCR do
Invitrogen cung cấp. Danh sách các gen nghiên cứu với mã số cặp mồi tương
ứng do Quiagen cung cấp và được trình bày trong Bảng 2.1.
Bảng 2.1. Mã số cặp mồi của các gen
Tên gen Mã số cặp mồi Nguồn cung cấp
CD44 QT00073549 Qiagen
ALDH QT00013286 Qiagen
SOX2 QT00237601 Qiagen
CCNE1 QT00041986 Qiagen
CCND1 QT00495285 Qiagen
P21 QT00006615 Qiagen
P27 QT00244993 Qiagen
PCNA QT00024633 Qiagen
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Ghi chú: Toàn bộ các mồi được Qiagen cung cấp ở dạng mã số, không cung cấp thông tin trình tự (bảo mật thiết kế).
29
Sự thay đổi về mức độ biểu hiện gen được tính theo phương pháp Delta
delta ct (ΔΔCt). Kết quả được trình bày dưới dạng trung bình của 3 lần lặp lại
của thí nghiệm với độ lệch chuẩn SD, cỡ mẫu cho mỗi lần thí nghiệm n=3.
2.4.9. Phương pháp phân tích thống kê
Phân tích giá trị khác biệt về mặt thống kê giữa các nhóm đối chứng và
nhóm thí nghiệm theo Mann - Whitney, sử dụng phần mềm GraphPad Prism
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
5.0.
30
CHƯƠNG 3. KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN
3.1. Kết quả thu thập và xác định tên khoa học và thu dịch chiết ethanol
cây Lá khôi
Cây Lá khôi được thu thập tại huyện Định Hóa, tỉnh Thái Nguyên, sau
đó được xử lý tươi ngoài thực địa và xử lý khô tại phòng thí nghiệm. Mẫu cây
Lá khôi được xác định tên khoa học là loài Ardisia gigantifolia Stapf. và lưu
trữ tại phòng thí nghiệm Sinh học – khoa Công nghệ Sinh học – Trường Đại
học Khoa học – Đại học Thái Nguyên.
Hình 3.1. Mẫu cây Lá khôi (Ardisia gigantifolia Stapf.)
Từ 15 gam bột Lá khôi, sau khi tách chiết bằng ethnol đã thu được 1,81
gam cao khô tương ứng với tỷ lệ 12,1%. Toàn bộ cao khô được hòa tan trong
DMSO và sử dụng cho các nghiên cứu tiếp theo.
3.2. Nuôi cấy tăng sinh tế bào trong điều kiện nuôi cấy 2D
Nuôi cấy tế bào (2D) đã được sử dụng như mô hình in vitro để nghiên
cứu phản ứng của tế bào đối với các kích thích từ các tín hiệu sinh lý và sinh
hóa [38]. Để chuẩn bị vật liệu cho các nghiên cứu tiếp theo thì việc nuôi cấy
tăng sinh tế bào trong điều kiện 2D có vai trò rất quan trọng. Trong nghiên
cứu này, dòng tế bào MKN45 đã được nuôi cấy tăng sinh trong môi trường
RPMI 1640 bổ sung 10% FBS và kháng sinh. Kết quả nuôi cấy được trình
bày trong hình 3.2
Hình 3.2. Nuôi cấy tăng sinh tế bào MKN45 trong điều kiện nuôi cấy 2D
(Thang đo 50 µm)
Kết quả hình 3.2 cho thấy, sau 5 ngày nuôi cấy, các tế bào MKN45 sinh
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
trưởng tốt trên bề mặt hộp nuôi cấy. Các tế bào có hình dạng ovan hoặc hình
31
tròn điển hình. Các tế bào sinh trưởng trong điều kiện nuôi cấy 2D được thu
nhận tế bào phục vụ cho nuôi cấy 3D và các nghiên cứu ảnh hưởng của dịch
chiết Lá khôi lên chu kỳ tế bào.
3.3. Nuôi cấy tumorsphere của các tế bào ung thư dạ dày trong điều kiện
nuôi cấy 3D
Để thử tác động của dịch chiết Lá khôi lên sự hình thành và phát triển của
các tumorsphere, chúng tôi tiến hành nuôi cấy tế bào từ các tế bào nuôi cấy
2D. Kết quả nuôi cấy hình 3.3 cho thấy, trên bề mặt không bám dính và môi
trường chứa các chất sinh trưởng FGF, EGF, insulin, các tế bào gốc ung thư
đã tạo ra các khối cầu hay còn gọi là tumorsphere. Các tumosphere được hình
thành và tăng dần kích thước theo thời gian nuôi cấy. Từ kích thước nhỏ gồm
5-7 tế bào trong ngày thứ 2 nuôi cấy, các tumosphere đã tăng kích thước
nhanh chóng sau 4–7 ngày nuôi cấy. Ở ngày nuôi cấy từ 5–7 ngày, các
tumorsphere đã có kích thước hình cầu điển hình chứa một lượng lớn tế bào
đơn so với ngày nuôi cấy thứ 2 hoặc 3.
Hình 3.3. Nuôi cấy tumorpshere hình thành từ các tế bào gốc ung thư dạ
dày MKN45 theo thời gian nuôi cấy từ 0 đến 7 ngày. Thang đo 50 µm.
Ảnh chụp ở độ phóng đại 200 lần.
Các tumosphere sau 7 ngày nuôi cấy có đường kính từ 100 - 300µm. Đây
là tiền đề quan trọng để chúng tôi tiến hành thí nghiệm tiếp theo là xử lý các
tumorsphere với dịch chiết Lá khôi trước khi tiến hành phân tích ảnh hưởng
của dịch chiết lên chu kỳ tế bào và sự biểu hiện của các gen quan tâm.
3.4. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên số lượng và kích thước các
tumorsphere
Để khẳng định được ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên sự phát triển
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
của các tumorsphere. Xử lý các tumorsphere sau 5 ngày nuôi cấy với dịch
32
chiết Lá khôi ở nồng độ 75µg/ml, thời gian xử lý 48h. Đây là nồng độ tương
ứng với giá trị IC50 của dịch chiết Lá khôi đã được chỉ ra trong một nghiên
cứu trước đó khi đánh giá độc tính của dịch chiết Lá khôi bằng ethanol lên tế
bào MKN45 trong điều kiện nuôi cấy 2D [7]. Kết quả chụp ảnh và đo, đếm số
lượng tumorsphere dưới kính hiển soi ngược thể hiện trong hình 3.4.
Hình 3.4. Dịch chiết Lá khôi tác động lên khả năng hình thành tumorsphere
và kích thước của tumorsphere. Thang đo 50 µm. Tumorsphere được đếm và
đo kích thước ở ngày thứ 5 của quá trình nuôi cấy
Kết quả xử lí các tumorsphere với dịch chiết Lá khôi trong hình 3.4 cho
thấy, dịch chiết Lá khôi ở nồng độ 75µg/ml đã làm giảm mạnh số lượng
tumorsphere cũng như kích thước các tumorsphere. Cụ thể so với mẫu đối
chứng sau 48h xử lý, số lượng các khối cầu giảm 50%, kích thước các khối
cầu cũng giảm khoảng 80% so với mẫu đối chứng. Thêm vào đó, hình thái
tumorsphere ở mẫu xử lý đã bị biến đổi mạnh, các khối cầu bị phân rã thành
các tế bào đơn. Điều này cũng đồng nghĩa là khi xử lý với dịch chiết Lá khôi
đã thay đổi đặc tính phân chia, tăng sinh của tế bào trong các tumorsphere.
Như vậy, dịch chiết Lá khôi đã tác động rõ rệt lên sự sinh trưởng và phát triển
của các tumorsphere.
3.5. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên chu kỳ tế bào
Để thực hiện mục tiêu trọng tâm của đề tài là đánh giá sự tác động của
dịch chiết Lá khôi lên các pha của chu kỳ tế bào ung thư dạ dày. Các
tumorsphere sau 48h xử lý với dịch chiết Lá khôi ở nồng độ 75µg/ml được
thu nhận và phân tách thành các tế bào đơn, sau đó phân tích chu kỳ tế bào
bằng hệ thống Flow cytometry. Kết quả phân tích chu kỳ tế bào được trình
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
bày trong hình 3.5 dưới đây.
33
Kết quả hình 3.5 chỉ ra rằng, dòng tế bào MKN45 được xử lý với dịch
chiết Lá khôi có sự tích lũy cao các tế bào tại pha G0/ G1. Dòng tế bào ung thư
này sau khi được xử lý với dịch chiết Lá khôi đã giảm mạnh ở pha S và pha
G2/M nhưng lại có tăng tỷ lệ các tế bào phase G0/ G1 lên tới 63,3% so với đối
chứng là 46,7%. Như vậy, sự ức chế phân chia tế bào của dòng tế bào
MKN45 có thể được giải thích bởi sự dừng chu kỳ tế bào ở pha G0/ G1 – pha
nghỉ giữa 2 lần phân chia tế bào. Pha này đặc trưng cho các tế bào ở trạng thái
biệt hóa hoặc lão hóa. Rất có thể dịch chiết Lá khôi đã cảm ứng quá trình già
hóa, biệt hóa tế bào gốc ung thư dạ dày và làm dừng sự tăng trưởng của tế bào
ung thư MKN45.
Hình 3.5. Dịch chiết Lá khôi tác động lên chu kỳ tế bào của tế bào trong các
tumorsphere. Thang đo 50 µm
Năm 2014, Aeyung Kim và cộng sự cũng nghiên cứu về ảnh hưởng của
KIOM-C (là hợp chất chiết xuất từ các cây thuốc thảo dược bao gồm: Radix
Scutellariae, Radix Glycyrrhizae, Radix Paeoniae alba, Radix Angelicae
gigantis, Grandiflorum, Zingiber officinale và Lonicera japonica) đến khả
năng gây chết tế bào ung thư và làm sáng tỏ các cơ chế chống ung thư tiềm
ẩn. Phân tích chu trình tế bào cho thấy, xử lý KIOM-C trong 12h và 24h đã
tăng tỷ lệ tế bào trong pha G1 lên 57,14 và 55,53%, so với tế bào đối chứng
không được xử lý (36,69%). Sự tăng pha G1 này đi kèm với sự giảm tương
ứng tỷ lệ các tế bào trong các pha S và G2/M. Phân nhóm apoptotic G0/G1
đỉnh đã tăng đáng kể khi xử lý bằng KIOM-C lên 7,92 và 13,96% sau khi ủ
12h và 24h so với các tế bào đối chứng (3,24%), cho thấy việc ngừng chu kỳ
tế bào G1 do KIOM-C gây ra đã làm chậm quá trình tăng trưởng và sau đó
gây ra quá trình apoptosis [15]. Năm 2016, tác giả JIN ZHOU và cộng sự
cũng nghiên cứu về tác dụng của hợp chất Quercetin, là một hợp chất tự nhiên
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
có nguồn gốc từ thực vật lên các tế bào HepG2 bằng cách cho các tế bào
34
HepG2 được xử lý với 50 Quercetin trong 24h, 48h hoặc 72h và phân tích chu
kỳ tế bào bằng phương pháp Flow cytometry. Kết quả, chu kỳ tế bào của
HepG2 đã thay đổi đáng kể sau khi xử lý với nồng độ Quercetin phù hợp; tỷ
lệ tế bào trong pha G0/G1 tăng lên và những tế bào trong pha S giảm dần so
với các tế bào HepG2 đối chứng. Như vậy, Quercetin có thể gây ra sự dừng
pha G1 trong các tế bào HepG2. Dựa trên các quan sát đã nói ở trên, người ta
cho rằng Quercetin thực hiện hoạt động chống ung thư trong các tế bào
HepG2 thông qua nhiều con đường, bao gồm can thiệp vào biểu hiện gen
CCND1 để phá vỡ chu kỳ tế bào và tăng sinh của tế bào HepG2 [37]. Gần
đây, tác giả Ho Jeong Lee và cộng sự đã nghiên cứu Pectolinarigenin, một
flavonoid tự nhiên có trong Cirsium chanroenicum. Trong nghiên cứu này đã
chỉ ra cơ chế chống ung thư của Pectolinarigenin là làm chết tế bào gây ra bởi
bệnh autophagy và apoptosis trong tế bào ung thư dạ dày AGS và MKN28 ở
người. Hơn nữa, việc xử lý Pectolinarigenin đã làm giảm tỷ lệ phần trăm của
pha G1 và tăng các tế bào pha G1 và G2/M. Nghiên cứu này đã làm sáng tỏ cơ
chế chống ung thư mới của PEC đối với dòng tế bào ung thư dạ dày AGS và
MKN28 ở người bằng việc làm dừng pha G2/M, quá trình apoptosis trong in
vitro [34].
AG36 là sản phẩm biến đổi sinh học của Triterpenoid saponin từ cây
Lá khôi (Ardisia gigantifolia Stapf). AG36 làm giảm sự biểu hiện protein của
các protein quy định chu kỳ cyclin B1 hoặc cyclin D1. Trong các tế bào
MCF-7 và MDA-MB-231, AG36 đã tăng cường biểu hiện protein caspase-3
và caspase-8, trong khi đó ở các tế bào SK-BR-3, AG36 chỉ làm tăng sự biểu
hiện protein của caspase-3. Các nghiên cứu in vivo cho thấy, AG36 ức chế
đáng kể sự phát triển của khối u xenograft MCF-7 ở chuột nhắt BALB/c so
với mẫu đối chứng [51].
3.6. Tách chiết RNA tổng số và tổng hợp cDNA
Để đánh giá tác động của dịch chiết Lá khôi lên sự biểu hiện của các gen
kiểm soát chu kỳ tế bào của tế bào gốc ung thư dạ dày. RNA tổng số từ các tế
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
bào đối chứng không xử lý với dịch chiết Lá khôi và tế bào xử lý với dịch
35
chiết Lá khôi đã được tách chiết và tinh sạch bằng phương pháp Trizol. Kết
quả tách chiết được biểu thị trong hình 3.6.
RNA tổng số được tách chiết từ các tế bào ung thư dạ dày thu nhận sau
quá trình nuôi cấy được định lượng bằng máy đo quang phổ NanoDrop ở
bước sóng hấp thụ 260 nm đối với acid nucleic và bước sóng hấp thụ 280nm
đối với protein. Kết quả được thể hiện ở hình 3.6 và bảng 3.1.
Hình 3.6. Phổ hấp thụ của RNA tổng số tách chiết từ các tumorsphere
Bảng 3.1. Nồng độ RNA từ mẫu đối chứng và mẫu xử lý
Kết quả trong hình 3.6 và bảng 3.1 cho thấy, phổ hấp thụ huỳnh quang
của các mẫu RNA tổng số đã cho thấy, RNA thu được có độ tinh sạch cao, thể
hiện qua giá trị 260/280 của tất cả các mẫu đối chứng (Control) và mẫu xử lý
với dịch chiết Lá khôi (LK 75µg/ml từ 1-3) đều trong khoảng từ 1,87 – 1,94
đáp ứng tốt cho các phản ứng PCR. Hơn nữa, RNA của các mẫu thu được đều
có hàm lượng cao thể hiện ở hàm lượng từ 212,7 đến 560,4ng/µl. Từ nồng độ
này, qua tính toán chúng tôi đã sử dụng lượng RNA là 1µg để tổng hợp lên
cDNA phục vụ cho phân tích Realtime-PCR trong các nghiên cứu tiếp theo.
3.7. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên các gen của tế bào gốc ung thư
Như đã giới thiệu trong phần tổng quan, trong quần thể tế bào ung thư,
các tế bào gốc có chức năng phân chia, tăng sinh và biệt hóa tế bào. Chính vì
vậy, trước khi tiến hành đánh giá tác động của dịch chiết Lá khôi lên chu kỳ
tế bào, chúng tôi đánh giá ảnh hưởng của nó lên các gen đặc trưng của tế bào
gốc ung thư dạ dày. Các gen được lựa chọn để phân tích là các gen marker tế
bào gốc (CD44 và ALDH) và gen tự làm mới tế bào (SOX2). Kết quả phân
tích biểu hiện gen bằng Realtime PCR được trình bày trong hình 3.7.
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
36
Hình 3.7. Dịch chiết Lá khôi tác động lên sự biểu hiện các gen mã hóa cho
marker tế bào gốc (CD44 và ALDH) và gen tự làm mới tế bào (SOX2)
Quan sát hình 3.7 cho thấy rằng, dịch chiết Lá khôi đã làm giảm rõ rệt mức
độ biểu hiện của CD44 và SOX2. Trong đó, mức độ giảm biểu hiện mạnh nhất
là ở gen SOX2 với mức giảm thiểu khoảng 50%, sau đó đến CD44 mức độ biểu
hiện giảm khoảng 30%. Tuy nhiên, gen ALDH không có sự thay đổi rõ rệt về
mức độ biểu hiện mRNA giữa các tế bào MKN45 xử lý với dịch chiết Lá khôi
và mẫu đối chứng được xử lý với DMSO nồng độ 0,01% trong thời gian tương
ứng.
CD44 là một phân tử bề mặt tế bào đa cấu trúc và đa chức năng liên quan
đến sự tăng sinh tế bào, biệt hóa tế bào, di chuyển tế bào, tạo mạch… [60]. Năm
2015, Anasuya Ray và cộng sự đã nghiên cứu về hoạt động ức chế của hợp chất
6-shogaol có nguồn gốc từ Gừng (Zingiber officinale) chống lại các tế bào ung
thư vú và nhận thấy rằng, 6-shogaol có hiệu quả trong việc tiêu diệt cả tế bào
đơn nhân ung thư vú. Hình ảnh miễn dịch huỳnh quang đã cho thấy, sau khi
được xử lý với 6-shogaol biểu hiện của CD44 cao hơn đáng kể với các tế bào
MCF-7 không được xử lý với 6-shogaol. Đồng thời, phân tích Flow cytometry
cũng cho thấy, CD44 tăng cao trong các tế bào hình cầu so với các tế bào đối
chứng [22]. Năm 2017, hai tác giả Emika Ohkoshi và Naoki Umemura đã
nghiên cứu về Baicalein - một trong những thành phần chính trong rễ cây
Scutellaria. Họ đã kiểm tra xem các thành phần thuốc thảo dược có ảnh hưởng
đến biểu hiện CD44 và gây ra apoptosis tế bào ung thư như thế nào. Kết quả là
Baicalin tăng cường apoptosis không ảnh hưởng đến nồng độ CD44, trong khi
Baicalein không tăng cường apoptosis và điều hòa CD44 trong ung thư biểu mô
tế bào vảy ở đầu và cổ. Hơn nữa, Baicalein gây ra sự phosphoryl hóa CHK1, như
một dấu hiệu phản ứng phá hủy DNA đối với việc dừng pha G2/M. Kết quả này
đã chứng minh rõ ràng rằng, Baicalein tăng cường biểu hiện của CD44 và theo
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
đó tăng cường phản ứng phá hủy DNA. Những dữ liệu này cho thấy rằng, cảm
37
ứng CD44 đã ức chế tế bào ung thư gây ra apoptosis bằng cách tăng phản ứng
phá hủy DNA [27]. Gần đây, Daliang Chen và cộng sự cũng đã nghiên cứu tác
động của Galangin (3,5,7 trihydroxyflavone), một loại flavonoid tự nhiên có
trong thực vật có thể ức chế EMT, sự hình thành mạch và biểu hiện CD44 trong
bệnh u thần kinh đệm. Họ quan sát thấy rằng, Galangin ức chế sự tăng sinh, di
cư, xâm lấn và tạo mạch của các tế bào u thần kinh đệm bằng cách phụ thuộc
vào liều lượng, ức chế sự biểu hiện của CD44 và ức chế sự hình thành mạch của
các tế bào glioma thông qua yếu tố tăng trưởng nội mô mạch máu. Ngoài ra, sự
biểu hiện quá mức của CD44 trong các tế bào U87 và U251 đã xóa bỏ một phần
ảnh hưởng của Galangin đối với các tế bào u thần kinh đệm. Những kết quả này
chỉ ra rằng, Galangin là một loại thuốc mới tiềm năng để điều trị u nguyên bào
thần kinh đệm do khả năng ức chế CD44, EMT và sự hình thành mạch. Kết quả
này cũng chứng minh rằng, Galangin giảm mức độ mRNA và protein của CD44,
Snail, vimentin và ZEB1 [24].
SOX2 là một yếu tố phiên mã rất cần thiết để duy trì khả năng tự đổi mới,
hoặc đa năng của các tế bào gốc phôi không biệt hoá. SOX2 có vai trò quan
trọng trong việc duy trì tế bào gốc phôi và tế bào thần kinh [32]. Năm 2016,
Zhang và cộng sự đã nghiên cứu về Cryptotanshinone (CT), một loại thuốc thảo
dược truyền thống của Trung Quốc. Kết quả chứng minh rằng, sử dụng CT làm
thay đổi sự tăng sinh tế bào, tình trạng chu kỳ tế bào, di cư, khả năng sống, sự
hình thành khuẩn lạc và đáng chú ý là sự hình thành khối cầu và điều chỉnh giảm
các gen (Nanog, OCT4, SOX2, β-catenin, CXCR4). Cụ thể là CT làm giảm mức
độ biểu hiện của một số gen nhất định trong tế bào, đặc biệt là biểu hiện của
Nanog, BMI1 và catenin. Mức giảm mRNA đáng kể về mặt thống kê đã được
quan sát ở 5 nhóm điều trị CT. Điều trị CT làm giảm mức độ biểu hiện protein
Nanog, SOX2 và OCT4 bằng cách phụ thuộc vào tổng số tế bào và các tế bào
hình cầu [85]. Năm 2018, Zhen-Fei Wang và cộng sự đã nghiên cứu tác động
của Astragaloside IV (được phân lập từ Radix Astragali là một loại thảo dược
quan trọng của Trung Quốc) và đưa ra kết luận rằng, Astragaloside IV ngăn Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
38
ngừa GCAFs, điều chỉnh tăng các yếu tố gây ung thư SOX2 và NANOG trong
các tế bào ung thư dạ dày [86]. Năm 2018, Lan Thị Hạnh Phi và cộng sự đã
nghiên cứu tác động của hợp chất Ginsenoside Rb2, một saponin từ Nhân sâm
Panax lên tế bào ung thư đại trực tràng. Kết quả cho thấy rằng, Ginsenoside Rb2
đã ức chế đáng kể biểu hiện của SOX2. Những kết quả này cho thấy,
Ginsenoside Rb2 ức chế các đặc tính giống như tế bào gốc thông qua SOX2.
Đặc biệt, chứng minh rằng việc kích hoạt EGFR gây ra biểu hiện SOX2 và
ngược lại, SOX2 liên kết với EGFR làm tăng mức độ biểu hiện EGFR và do đó,
hình thành mối quan hệ phản hồi tích cực giữa EGFR và SOX2 [50].
ALDH là một marker của tế bào gốc ung thư trong nhiều typ ung thư
khác nhau như: ung thư ruột, ung thư buồng trứng, ung thư gan. Một nghiên
cứu gần đây của Nguyễn Phú Hùng và cs tại đã xác định ALDH là một
marker đặc trưng của tế bào gốc ung thư dạ dày [6]. Tetrandrine là một
alcaloid bcdenzylisoquinoline được tìm thấy trong Stephania tetrandra. Hợp
chất này đã được tác giả Wei Xu và cộng sự nghiên cứu tác động của nó lên tế
bào ung thư vú năm 2011 và đã kết luận rằng, Tetrandrine làm giảm số lượng
ALDH+. Điều này có nghĩa là Tetrandrine ức chế các tế bào dương tính với
ALDH ở nồng độ tương tự [81]. Năm 2012, Qing-An Jia và cộng sự đã
nghiên cứu về tác động của hợp chất Songyou Yin (một loại thuốc truyền
thống của Trung Quốc) lên ung thư biểu mô tế bào gan và đã cho kết luận
rằng, Songyou Yin làm giảm biểu hiện của CD90, ABCG2, ALDH, CD44,
EPCAM, vimentin và MMP-9 và tăng biểu hiện của E-cadherin, trong các tế
bào ung thư biểu mô tế bào gan sau khi điều trị kết hợp [66].
Kết quả nghiên cứu này chỉ ra rằng, dịch chiết Lá khôi đã tác động là
giảm sự biểu hiện của 2 trong số 3 gen chủ chốt của tế bào gốc ung thư được
phân tích.
3.8. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên các gen kiểm soát chu kỳ tế
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
bào
39
Để nghiên cứu ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên các gen kiểm soát
chu kỳ tế bào. Chúng tôi tiến hành phân tích ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi
lên sự phiên mã của 5 gen kiểm soát chu kỳ tế bào chính gồm: P21, P27,
CCND1, CCNE1, PCNA. Các phản ứng PCR đã được thực hiện với các cặp
mồi đặc hiệu tương ứng với 5 gen do Quiagene cung cấp. Kết quả biểu hiện
gen giữa các mẫu đối chứng và mẫu được xử lý với dịch chiết Lá khôi được
trình bày dưới dạng biểu đồ ở hình 3.8. Kết quả phân tích ở biểu đồ hình 3.8
cho thấy, sau khi xử lí với dịch chiết Lá khôi, các gen P21 và CCNE1 có sự
thay đổi biểu hiện ở mức độ phiên mã. Ngược lại, các gen P27, CDND1,
PCNA không có sự thay đổi đáng kể.
Hình 3.8. Dịch chiết Lá khôi tác động lên các gen kiểm soát chu kỳ phân chia
của tế bào
Trong nghiên cứu này, hai gen P21 và CCNE1 được chúng tôi lựa chọn để
nghiên cứu sự ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên sự biểu hiện gen ở mức độ
phiên mã. Nhìn vào kết quả ở hình 3.8 ta thấy, dưới tác dụng của dịch chiết Lá
khôi mức độ biểu hiện mRNA của P21 tăng mạnh khoảng 5 lần so với mẫu đối
chứng. Kết quả phân tích cũng cho thấy, sự biểu hiện của gen CCNE1 ở mức
độ phiên mã bị giảm đi đáng kể khi chịu tác động của dịch chiết Lá khôi.
CCNE1 là gen mã hóa cho protein Cyclin-E1 đặc hiệu G1/S [46]. Trước đó, các
nghiên cứu khác nhau đã đề cập đến khả năng áp chế sự biểu hiện của P21 và
các một số gen kiểm soát chu kỳ tế bào của một số hợp chất từ thực vật. Điển
hình như, E-Chu Huang và cộng sự đã nghiên cứu tác động của Zyflamend,
một hỗn hợp chiết xuất của 10 loại thảo dược lên tế bào ung thư tuyến tiền liệt.
Kết quả cho thấy, Zyflamend đã cảm ứng của các chất ức chế chu kỳ tế bào
P21 ở mức độ mRNA và protein. Kết quả là, trong các tế bào CWR22Rv1,
Zyflamend làm cho nồng độ protein của P21 tăng gấp 2,4 lần so với đối
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
chứng [25]. Cùng năm 2014, tác giả Ruowen Zhang và cộng sự đã thực hiện
40
nghiên cứu về tác động của Yuanhuacine (YHL-14), thành phần chính của
daphnane diterpene ester phân lập từ nụ hoa của Daphne genkwa. Việc tác
động các tế bào bằng YHL-14 không gây ra hiệu quả rõ rệt đối với quá trình
apoptosis của tế bào, nhưng nó đã gây ra sự dừng pha G2/M ở cả tế bào T24T
và HCT116, cho thấy rằng dừng pha G2/M có thể liên quan đến hiệu ứng chống
ung thư của YHL-14. Do P21 là chất ức chế chu kỳ tế bào quan trọng liên quan
đến điều hòa chu kỳ tế bào, nên tác dụng của YHL-14 đối với biểu hiện P21 và
biểu hiện của yếu tố phiên mã ngược dòng của nó được đánh giá trong cả tế
bào T24T và HCT116. Kết quả sau khi xử lý bằng YHL-14 trong 12h, biểu
hiện protein P21 được điều chỉnh tăng đáng kể ở cả tế bào T24T và HCT116
[69]. Năm 2017, tác giả Hyun-Woo Lee và cộng sự đã chứng minh tác dụng
của Celastrol, một triterpene được chiết xuất từ vỏ rễ của từ rễ
cây Trypterigium wilfordii đối với bệnh ung thư dạ dày. Kết quả cho thấy, sự
biểu hiện của các protein liên quan đến chu trình tế bào, như P21 và P27 đã
tăng lên rõ rệt và biểu hiện của cyclin D1 đã giảm khi tác động bằng celastrol
từ nồng độ 0,25 μM đến 1 μM [35]. Cũng trong năm 2017, Bing Hu và cộng sự
đã tìm hiểu về hợp chất Teng-Long-Bu-Zhong-Tang là một công thức thảo
dược của Trung Quốc để điều trị ung thư biểu mô đại trực tràng. Teng-Long-
Bu-Zhong-Tang có hiệu quả gây ra lão hóa tế bào trong ung thư biểu mô đại
trực tràng, kèm theo sự điều hòa P21. Trong nghiên cứu này, tác giả đã đánh
giá liệu sự lão hóa tế bào do Teng-Long-Bu-Zhong-Tang có liên quan đến P21
hay không, phân tích P21 bởi siRNA cụ thể đã loại bỏ đáng kể sự lão hóa tế
bào do Teng-Long-Bu-Zhong-Tang gây ra. Những quan sát này cho thấy sự lão
hóa tế bào do Teng-Long-Bu-Zhong-Tang gây ra phụ thuộc vào P21. Sự biểu
hiện P21 đã giảm đi bằng cách can thiệp RNA và làm suy giảm đáng kể sự lão
hóa tế bào do Teng-Long-Bu-Zhong-Tang gây ra trong các tế bào ung thư đại
trực tràng LS174T ở người [19].
Trong nghiên cứu này, kết quả phân tích cho thấy, sự biểu hiện ở mức độ
phiên mã của các gen P27, CCND1, PCNA không chịu ảnh hưởng của dịch Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
41
chiết Lá khôi. P27 được coi là một chất ức chế khối u vì chức năng của nó
như là một bộ điều chỉnh chu kỳ tế bào. Trong các bệnh ung thư, P27 thường
bị bất hoạt thông bị suy yếu hoặc sai lệch vị trí [23]. Năm 2013, Aeyung
Kim và cộng sự đã nghiên cứu về tác động của Samsoeum (SSE), một công
thức thảo dược truyền thống của Trung Quốc lên các tế bào ung thư. Trong
quá trình điều trị SSE sớm, tác giả đưa ra kết luận rằng, các tế bào đã dừng
pha G2/M đồng thời với sự điều hòa tăng của P21 và P27 và điều hòa giảm
của cyclin D1 và cyclin B1, sau đó là sự gia tăng các tế bào YO-PRO-1 (+)
apoptotic [16]. Nghiên cứu ảnh hưởng của KIOM-C đến sự biểu hiện
của protein điều hòa pha G1 của P21, P27 và cyclin D1 cho thấy điều trị
KIOM-C điều chỉnh tăng mức độ của các chất ức chế kinase phụ thuộc cyclin
P21 và P27, trong khi nó điều chỉnh giảm mức độ của cyclin D1, so với các tế
bào đối chứng [15]. Trong quá trình phát triển của các khối u, cyclins loại D
đóng vai trò trung tâm trong quá trình chuyển đổi chu kỳ tế bào. Các nghiên
cứu gần đây đã tập trung vào mối tương quan giữa CCND1 và các bệnh ác
tính, như ung thư dạ dày và ung thư vú. Những thay đổi trong biểu hiện
CCND1 đã được quan sát trong các tế bào ung thư gan sau khi điều trị bằng
Quercetin đã cho kết quả như sau, có ba peptide chứa Leu của CCND1 được
phát hiện và điểm MS là xấp xỉ 158. Mức độ biểu hiện protein trung bình của
CCND1 đã giảm xuống 0,55 sau khi điều trị bằng Quercetin. Mức độ biểu
hiện RNA và protein của CCND1 đã giảm liên tục trong các tế bào HepG2
khi tiếp xúc với 50 quercetin trong 48h [37].
3.9. Ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên sự biểu hiện của protein P21
Sự tăng cường phiên mã của gen P21 có ý nghĩa rất quan trọng trong sự
hoạt hóa con đường tín hiệu lão hóa tế bào. Để đánh giá tác động của chiết Lá
khôi lên sự biểu hiện của P21 ở mức độ protein, chúng tôi đã sử dụng phương
pháp miễn dịch huỳnh quang với kháng thể đơn dòng kháng P21. Kết quả thu
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
được, được trình bày trong hình 3.9.
42
Hình 3.9. Dịch chiết Lá khôi tác động lên sự biểu hiện của protein kiểm soát
chu kỳ tế bào P21. Mầu đỏ biểu thị sự biểu hiện của P21, mầu xanh lam biểu
thị sự biểu hiện của DAPI (thuốc nhuộm nhân tế bào)
Kết quả ở hình 3.9 đã chỉ ra rằng, P21 được biểu hiện mạnh trong nhân tế
bào MKN45 được xử lý với dịch chiết Lá khôi so với tế bào đối chứng điều
này được thể hiện qua sự bắt mầu đỏ (hoặc đen trắng ở pha contrast) với
cường độ cao ở mẫu xử lý so với mẫu đối chứng. Kết quả này khẳng định
dịch chiết Lá khôi đã điều hòa tăng mạnh các gen P21, đây là gen chủ chốt
liên quan đến quá trình lão hóa tế bào.
Năm 2014, Yim và cộng sự cũng chỉ ra rằng, việc điều trị bằng Guibi-
tang (một bài thuốc thảo dược truyền thống) đã thay đổi biểu hiện của protein
liên quan đến tiến trình pha G1. Cụ thể, biểu hiện của P21 và P27 đã tăng lên,
trong khi mức cyclin D1 bị giảm. Ngược lại, mức độ cyclin B1, điều chỉnh
pha G2/M, không bị ảnh hưởng bởi Guibi-tang [65]. CIL-102 là một hoạt chất
chính dẫn xuất alkaloid của Camptotheca acuminata cũng đã được chứng
minh rằng, CIL-102 gây ra dừng chu kỳ tế bào và apoptosis của các tế bào
ung thư ruột kết bằng cách điều chỉnh tăng biểu hiện P21 và GADD45 và
bằng cách kích hoạt JNK1/2, NFκB p50 và p300 để cung cấp một cơ chế mới
cho điều trị CIL-102 và trong việc tạo ra P21 và GADD45 cũng như sự liên
kết giảm của cdc2/cyclin B [82].
P21 giữ vai trò then chốt trong việc kiểm soát chu kỳ tế bào. Trong
nghiên cứu này chúng tôi đã chỉ ra rằng, dịch chiết Lá khôi đã làm hoạt hóa
sự biểu hiện của P21 biểu hiện tăng lên ở cả mức độ mRNA và protein của tế
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
bào, dẫn tới làm dừng chu kỳ của tế bào.
43
KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ
1. KẾT LUẬN
1. Đã tiến hành thu thập mẫu lá từ cây Lá khôi, thuộc chi Ardisia họ Đơn
nem phân bố tại huyện Định Hóa, tỉnh Thái Nguyên. Đã thu được cao chiết
ethanol khô từ loài Ardisia gigantifolia với tỷ lệ 12,1%.
2. Dịch chiết Lá khôi 75µg/ml đã ức chế sự phát triển các tumorsphere
3D của các tế bào ung thư MKN45. Đã tách chiết thành công RNA tổng số từ
các tumorsphere của các tế bào MKN45 từ các tumorsphere trong điều kiện
xử lý hoặc không xử lý với dịch chiết Lá khôi với độ tinh sạch cao và hàm
lượng tốt.
3. Dịch chiết Lá khôi đã làm dừng chu kỳ tế bào ở pha G0/G1. Dịch chiết
Lá khôi đã ức chế mạnh sự biểu hiện của một số gen chủ chốt của tế bào gốc
ung thư gồm CD44 và SOX2 với mức giảm thiểu lần lượt là 30% và 50%.
Đặc biệt, dịch chiết Lá khôi đã điều hòa tăng cường sự biểu hiện của gen P21
ở cả hai mức độ mRNA và protein đồng thời làm giảm mức độ biểu hiện của
gen kiểm soát chu kỳ tế bào CCNE1.
Kết luận chung: Dịch chiết Lá khôi đã ức chế chu kỳ tế bào thông qua
điều hòa sự biểu hiện các gen kiểm soát chu kỳ tế bào và gen đặc trưng của tế
bào gốc ung thư dạ dày.
2. KIẾN NGHỊ
Tiếp tục nghiên cứu sâu hơn ảnh hưởng của dịch chiết Lá khôi lên sự các
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
các con đường tín hiệu của tế bào gốc ung thư dạ dày.
44
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tài liệu tiếng Việt
1. Nguyễn Quang Bộ (2017), ¨Nghiên cứu kết quả điều trị ung thư dạ dày 1/3
dưới bằng phẫu thuật triệt căn có kết hợp hóa chất¨, Luận án Tiến sĩ Y học,
Trường Đại học Y Dược Huế.
2. Võ Văn Chi (2012), Từ điển cây thuốc Việt Nam, tập 1, Nxb Khoa học và
Kỹ thuật, tr. 1276.
3. Nguyễn Nghĩa Thìn (2007), Các phương pháp nghiên cứu thực vật, Nxb
Đại học Quốc gia Hà Nội.
4. Nguyễn Văn Hiếu (2010), Ung thư dạ dày, Điều trị phẫu thuật bệnh ung
thư, Nxb Y học, tr. 256-268.
5. Nguyễn Phú Hùng, Lê Thị Thanh Hương (2018), "Xác định tế bào gốc ung
thư dạ dày và liệu pháp trúng đích", Tạp chí Y học Việt Nam, tr. 116-125.
6. Lê Thị Thanh Hương, Lưu Thị Bình, Diệp Thị Hương Giang, Nguyễn Phú
Hùng (2018), "All trans retinoic acid ức chế sự biểu hiện của các gen liên
quan tới khả năng tự làm mới và con đường tín hiệu phân tử Notch của tế
bào gốc ung thư dạ dày", Tạp chí Khoa học – Đại học Quốc gia Hà Nội:
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Khoa học Tự nhiên và Công nghệ, tập 34, số 4, tr. 30-36.
45
7. Lê Thị Thanh Hương (2015), ¨Nghiên cứu tính đa dạng nguồn cây thuốc
được sử dụng trong cộng đồng các dân tộc ở tỉnh Thái Nguyên nhằm bảo
tồn và phát triển bền vững¨, Luận án Tiến sĩ Sinh học, Trường Đại học
Khoa học Tự nhiên – Đại học Quốc gia Hà Nội.
8. Nguyễn Phúc Kiên (2015), ¨Đánh giá kết quả phẫu thuật ung thư dạ dày
sớm tại bệnh viện Việt Đức¨, Luận văn Bác sĩ chuyên khoa cấp II, Trường
Đại học Y Hà Nội.
9. Trần Thị Kim Liên (2002), Thực vật chí Việt Nam, tập 4, Nxb Khoa học và
Kỹ thuật.
10. Võ Duy Long (2017), ¨Đánh giá kết quả phẫu thuật nội soi điều trị ung
thư dạ dày theo giai đoạn I, II, III¨, Luận án Tiến sĩ Y học, Trường Đại học
Y Dược TP. Hồ Chí Minh.
11. Lê Viết Nho (2014), ¨Nghiên cứu sự biểu lộ của EGFR, HER2 và mối liên
quan với lâm sàng, nội soi, mô bệnh học ở bệnh nhân ung thư biểu mô dạ
dày¨, Luận án Tiến sĩ Y học, Trường Đại học Y Dược Huế.
12. Lê Anh Sơn, Đỗ Thị Hà, Vũ Thị Diệp, Đậu Bá Thìn, Nguyễn Thị Thảo
(2017), "Khảo sát thành phần hóa học và hoạt tính chống oxy hóa và gây
độc tế bào ung thư của dịch chiết Lá khôi tía", Tạp chí Dược liệu, tập 22,
số 6, tr. 346 - 351.
13. Đặng Văn Thởi (2017), ¨Nghiên cứu đặc điểm lâm sàng, thương tổn và
đánh giá kết quả lâu dài phẫu thuật triệt căn ung thư phần trên dạ dày¨,
Luận án Tiến sĩ Y học, Trường Đại học Y Dược Huế.
14. Trịnh Anh Viên (2017), ¨Nghiên cứu thành phần hóa học và hoạt tính sinh
học một số loài Ardisia thuộc họ Myrsinaceae ở Việt Nam¨, Luận án Tiến
sĩ Hóa học, Học viện Khoa học Công nghệ.
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Tài liệu tiếng Anh
46
15. Aeyung Kim, Minju Im, Nam-Hui Yim, Taesoo Kim and Jin Yeul Ma.
(2014), "A Novel Herbal Medicine, KIOM-C, Induces Autophagic and
Apoptotic Cell Death Mediated by Activation of JNK and Reactive Oxygen
Species in HT1080 Human Fibrosarcoma Cells", PLoS One, 9 (5), pp. 98703.
16. Aeyung Kim, Nam-Hui Yim, and Jin Yeul Ma. (2013), "Samsoeum, a
traditional herbal medicine, elicits apoptotic and autophagic cell death by
inhibiting Akt/mTOR and activating the JNK pathway in cancer cells",
BMC Complement Altern Med, pp. 213: 233.
17. Ang TL, Fock KM. (2014), "Clinical epidemiology of gastric cancer",
Singapore Med J, 55 (12), pp. 621-628.
18. Anita F, Cholewa, John J, Pipoly III, Ricketson. (2009), Myrsinaceae.
Flora of North America, Vol. 8, pp. 251, 257, 258, 302, 303.
19. Bing Hu, Hong-Mei An, Shuang-Shuang Wang, Jia-Lu Zheng, Xia Yan,
Xiao-Wei Huang, and Jian-Hui Tian. (2017), “Teng-Long-Bu-Zhong-Tang
induces P21-dependent cell senescence in colorectal carcinoma LS174T
cells via histone acetylation”, J Exp Pharmacol, 9, pp. 67–72.
20. Bjerknes M1, Cheng H. (2002), "Multipotential stem cells in adult mouse
gastric epithelium", Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 283(3), pp.
767-777.
21. Cavaleiro-Pinto M, Peleteiro B, Lunet N, et al. (2011), "Helicobacter
pylori infection and gastric cardia cancer: systematic review and meta-
analysis", Cancer Causes Control, 22 (3), pp. 375-387.
22. Casamayor M, Morlock R, Maeda H, et al. (2018), "Targeted literature
review of the global burden of gastric cancer", E Cancer Medical Science,
12, pp. 883.
23. Chu IM, Hengst L, Slingerland JM. (2008), "The Cdk inhibitor P27 in
human cancer: prognostic potential and relevance to anticancer therapy",
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Nat Rev Cancer, pp. 253-267.
47
24. Chao Zhang, Qiang Zhu, Jianzhong Gu, Shan Chen, Qian Li, and Liping
Ying (2019), “Down-regulation of CCNE1 expression suppresses cell
proliferation and sensitizes gastric carcinoma cells to Cisplatin”, Biosci
Rep, 39(6), pp. BSR20190381.
25. E-Chu Huang, Yi Zhao, Guoxun Chen, Seung Joon Baek, Michael F
McEntee, Steven Minkin, John P Biggerstaff and Jay Whelan. (2014),
"Zyflamend, a polyherbal mixture, down regulates class I and class II
histone deacetylases and increases P21 levels in castrate-resistant prostate
cancer cells", BMC Complement Altern Med, 14, pp. 68.
26. Elledge SJ. (1996), Cell cycle checkpoints: preventing an identity crisis,
274(5293), pp. 1664-1672.
27. Emika Ohkoshi and Naoki Umemura. (2017), "Induced overexpression of
CD44 associated with resistance to apoptosis on DNA damage response in
human head and neck squamous cell carcinoma cells", Int J Oncol, 50(2),
pp. 387–395.
28. Ferlay J, Soerjomataram I, Dikshit R, et al. (2015), "Cancer incidence and
mortality worldwide: sources, methods and major patterns in
GLOBOCAN 2012", Int J Cancer, 136 (5), pp. E359-386.
29. Ferro A, Morais S, Rota M, et al. (2018), "Tobacco smoking and gastric
cancer: meta-analyses of published data versus pooled analyses of individual
participant data (StoP Project)", Eur J Cancer Prev, 27 (3), pp. 197-204.
30. Ferro A, Morais S, Rota M, et al. (2018), "Alcohol intake and gastric
cancer: Meta-analyses of published data versus individual participant data
pooled analyses (StoP Project)", Cancer Epidemiol, 54, pp. 125-132.
31. Gorospe M, Wang X, Holbrook N.J. (1998), "P53-dependent elevation of
P21 Wafl expression by UV light is mediated through mRNA stabilization
and involves a vanadate-sensitive regulatory system", Mol.Cell.Biol, 18,
pp. 1400-1407.
32. Graham V, Khudyakov J, Ellis P, Pevny L (August 2003). "SOX2 functions Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
48
to maintain neural progenitor identity". Neuron, 39 (5), pp. 749–765.
33. Harvey Lodish, Arnold Berk, S Lawrence Zipursky, Paul Matsudaira,
David Baltimore and James Darnell (2000), Molecular Cell Biology, New
York: W. H. Freeman.
34. Ho Jeong Lee, Venu Venkatarame Gowda Saralamma, Seong Min
Kim, Sang Eun Ha, Suchismita Raha, Won Sup Lee, Eun Hee Kim, Sang Joon Lee, Jeong Doo Heo, and Gon Sup Kim. (2018), "Pectolinarigenin
Induced Cell Cycle Arrest, Autophagy, and Apoptosis in Gastric Cancer
Cell via PI3K/AKT/mTOR Signaling Pathway", Nutrients, 10(8), pp. 1043.
35. Hyun-Woo Lee, Kenny Seung Bin Jang, Hye Ji Choi, Ara Jo, Jae-Ho
Cheong, and Kyung-Hee Chun. (2017), "Celastrol inhibits gastric cancer
growth by induction of apoptosis and autophagy", BMB Rep, 47(12), pp.
697–702.
36. Javier Sastre, Jose Angel García-Saenz, and Eduardo Díaz-Rubio. (2006),
"Treatment of stomach cancer with chemotherapy", World J
Gastroenterol, 12(2), pp. 204–213.
37. Jin Zhou, Lu Li, Li Fang, Hua Xie, Wenxiu Yao, Yiang Zhou, Zhujuan Xiong, Li Wang, Zhixi Li, and Feng Luo. (2016), "Quercetin reduces
cyclin D1 activity and induces G1 phase arrest in HepG2 cells", Oncol Lett,
12(1), pp. 516–522.
38. Karimi P, Islami F, Anandasabapathy S, et al. (2014), "Gastric cancer:
descriptive epidemiology, risk factors, screening, and prevention", Cancer
Epidemiol Biomarkers Prev, 23 (5), pp. 700-713.
39. Kim H. S., Park J. W., Kwon O. K., Kim J. H., Oh S. R., Lee H. K., Bach
T. T., Quang B. H., Ahn K. S. (2014), Anti-inflammatory activity of a
methanol extract from Ardisia tinctoria on mouse macrophages and
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
pawedema. Mol Med Rep, 9(4), pp. 1388-1394.
49
40. Lahmidani N MEY, Nourdine Aqodad1, Dafr Allah Benajah1. (2018),
"Update on Gastric Cancer Epidemiology and Risk Factors ", Journal of
Cancer Therapy 9, pp. 242-254.
41. Li K, Dan Z, and Nie YQ. (2014), "Gastric cancer stem cells in gastric
carcinogenesis, progression, prevention and treatment", World J
Gastroenterol, 20 (18), pp. 5420-5426.
42. Lin XJ, Wang CP, Liu XD, et al. (2014), "Body mass index and risk of
gastric cancer: a meta-analysis", Jpn J Clin Oncol, 44 (9), pp. 783-791.
43. Lisa Hazard, John O’Connor, and Courtney Scaife. (2006), "Role of
radiation therapy in gastric adenocarcinoma", World J Gastroenterol,
12(10), pp. 1511–1520.
44. Lodish H, Berk A, Zipursky SL. (2000), Molecular Cell Biology, New
York: WH Freeman.
45. Lee Yeuan Ting, Dr. OonChernEin. (2017), Cancer and precision
medicine, Scientific-Malaysian.
46. Lew DJ, Dulić V, Reed SI. (1991). "Isolation of three novel human cyclins
by rescue of G1 cyclin (Cln) function in yeast". Cell, 66 (6), pp. 1197–1206.
47. Liu Yang, Dongdong Fang, Huijun Chen, Yiyu Lu, Zheng Dong, Han-Fei Ding, Qing Jing, Shi-Bing Su, and Shuang Huang. (2015), "Cyclin-
dependent kinase 2 is an ideal target for ovary tumors with elevated cyclin
E1 expression", Oncotarget, 6(25), pp. 20801–20812.
48. Liu XH, Tang DE, Dai Y, Gao XJ, Liu LX. (2019), "PCNA and GSK3β
interact with each other to regulate H1299 lung adenocarcinoma cells
apoptosis", Neoplasma, pp. 190116N48.
49. Lahmidani N MEY, Nourdine Aqodad1, Dafr Allah Benajah1. (2018),
"Update on Gastric Cancer Epidemiology and Risk Factors ", Journal of
Cancer Therapy 9, pp. 242-254.
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
50. Lan Thi Hanh Phi, Yoseph Toni Wijaya, Ita Novita Sari, Ying Gui Yang,
50
Yun Kyung Lee, and Hyog Young Kwon. (2018), “The anti‐ metastatic
effect of ginsenoside Rb2 in colorectal cancer in an EGFR/SOX2 -
dependent manner”, Cancer Med, 7(11). pp. 5621–5631.
51. Li-Hua Mu, Yu-Ning Wang, Dong-Xiao Wang, Jing Zhang, Li Liu, Xian- Zhe Dong, Yuan Hu, and Ping Liu. (2017), “AG36 Inhibits Human Breast
Cancer Cells Proliferation by Promotion of Apoptosis In vitro and In
vivo”, Front Pharmacol, 8, pp. 15
52. Mu LH, Yan H, Wang YN, Yu TF, Liu P. (2019), “Triterpenoid Saponins
from Ardisia gigantifolia and Mechanism on Inhibiting Proliferation of
MDA-MB-231 Cells”, Biol Pharm Bull, 42(2), pp. 194-200.
53. Mu L. H., Bai L., Dong X. Z., Yan F. Q., Guo D. H., Zheng X. L., Liu P.
(2014), "Antitumor activity of triterpenoid saponin-rich Adisia gigantifolia
extract on human breast adenocarcinoma cells in vitro and in vivo", Biol
Pharm Bull, 37(6), pp. 1035-1041.
54. Mu LH, Huang XW, Guo DH, Dong XZ, Liu P. (2013), "
A new triterpenoid saponin from Ardisia gigantifolia", J Asian Nat Prod
Res, 15(10), pp. 1123-1129.
55. Mu LH, Huang CL, Zhou WB, Guo DH, Liu P. (2013), "Methanolysis of
triterpenoid saponin from Ardisia gigantifolia Stapf. and structure-activity
relationship study against cancer cells", Bioorg Med Chem Lett, 23(22),
pp. 6073-6078.
56. Mu L. H., Wei N. Y., & Liu P. (2012), “Cytotoxic triterpenoid saponins
from Ardisia gigantifolia”, Planta Med, 78(6), pp. 617-621.
57. Mu L.H., Gong Q.Q., Zhao H.X., & Liu P. (2010),"Triterpenoid saponins
from Ardisia gigantifolia", Chem Pharm Bull (Tokyo), pp. 1248-1251.
58. Mu LH, Gu YJ, Wang LH, Ma BP, Lu L, Liu P. (2015),
“Biotransformation on the triterpenoid saponin of Ardisia gigantifolia by
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
Aspergillus avenaceus AS 3.4454", J Asian Nat Prod Res, 17(1), 40-46.
51
59. Mu LH, Gu YJ, Ma BP, Lu L, Liu P. (2015), "Two new triterpenoid
saponins obtained by microbial hydrolysis with Alternaria alternata AS
3.6872", Nat Prod Res, 29(7), pp. 638-643.
60. Naor D, Nedvetzki S, Golan I, Melnik L, Faitelson Y. (2002). "CD44 in
cancer". Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences. 39 (6), pp.
527–579.
61. Nguekeu Y. M., Ndontsa B. L., Mbouangouere R., Awouafack M.D., Ito
T., Tane P., Morita H. (2016), “A New Alkenylmethylresorcinol from the
Fruits of Ardisia kivuensis, Nat Prod Commun”, 11(5), pp. 661-662.
62. Nguyen PH, Giraud J, Staedel C, et al. (2016), "All-trans retinoic acid
targets gastric cancer stem cells and inhibits patient-derived gastric
carcinoma tumor growth", Oncogene, 35 (43), pp. 5619-5628.
63. Nguyen PH, Giraud J, Chambonnier L, et al. (2017), "Characterization of
Biomarkers of Tumorigenic and Chemoresistant Cancer Stem Cells in
Human Gastric Carcinoma", Clin Cancer Res, 23 (6), pp. 1586-1597.
64. N.J. Agnantis, M. Bai. (2002), Lung and Breast Carcinomas, Molecular
Genetics.
65. Nam-Hui Yim, Aeyung Kim, Chun Liang, Won-Kyung Cho, and Jin Yeul
Ma. (2014), "Guibitang, a traditional herbal medicine, induces apoptotic
death in A431 cells by regulating the activities of mitogen-activated
protein kinases", BMC Complement Altern Med, 14, pp. 344.
66. Qing-An Jia , Zheng-Gang Ren , Yang Bu , Zhi-Ming Wang , Qiang-Bo
Zhang , Lei Liang , Xue-Mei Jiang , Quan-Bao Zhang and Zhao-You
Đường. (2012), "Herbal Compound “Songyou Yin” Renders
Hepatocellular Carcinoma Sensitive to Oxaliplatin through Inhibition of
Stemness", Evid Based Complement Alternat Med, 2012, pp. 908601.
67. Reya T., Morrison S.J., Clarke M.F., Weissman I.L. (2001), "Stem cells,
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
cancer, and cancer stem cells", Nature, 414(6859), pp. 105-111.
52
68. Robbins and Cotran; Kumar, Abbas, Fausto. (2004). Pathological Basis of
Disease, Elsevier.
69. Ruowen Zhang, Yulei Wang, Jingxia Li, Honglei Jin, Shaojiang Song,
and Chuanshu Huang. (2014), "The Chinese Herb Isolate Yuanhuacine
(YHL-14) Induces G2/M Arrest in Human Cancer Cells by Up-regulating
P21 Protein Expression through an P53 Protein-independent Cascade", J
Biol Chem, 289(10), pp. 6394–6403.
70. Sierra MS, Cueva P, Bravo LE, et al. (2016), "Stomach cancer burden in
Central and South America", Cancer Epidemiol, 44 Suppl 1, pp. S62-S73.
71. Shree Ram Singh. (2013), " Gastric cancer stem cells: A novel therapeutic
target", Cancer Lett, 338(1), pp. 110–119.
72. Tarek Abbas and Anindya Dutta. (2009), "P21 in cancer: intricate
networks and multiple activities", Nat Rev Cancer, pp. 400–414.
73. Totey S, Totey S, Pal R, Pal R. (2009), "Adult stem cells: a clinical
update", J Stem Cells, 4(2), pp. 105-121.
74. Uthman OA, Jadidi E, and Moradi T. (2013), "Socioeconomic position
and incidence of gastric cancer: a systematic review and meta-analysis", J
Epidemiol Community Health, 67 (10), pp. 854-860.
75. Vermeersch M., Foubert K., da Luz R. I., Van Puyvelde L., Pieters L.,
Cos P., Maes L. (2009), “Selective antileishmania activity of 13,28-epoxy-
oleanane and related triterpene saponins from the plant families
Myrsinaceae, Primulaceae, Aceraceae and Icacinaceae”. Phytother Res,
23, pp. 1404–1410.
76. Vinay Kumar Abul Abbas Nelson Fausto Jon Aster (2009), Robbins and
Cotran Pathologic Basis of Disease, eBook ISBN.
77. Victoria J. Gennaro, Timothy J. Stanek, Amy R. Peck, Yunguang Sun,
Feng Wang, Shuo Qie, Karen E. Knudsen, Hallgeir Rui, Tauseef Butt, J.
Alan Diehl, and Steven B. McMahon. (2018), "Control of CCND1
ubiquitylation by the catalytic SAGA subunit USP22 is essential for cell Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
53
cycle progression through G1 in cancer cells", Proc Natl Acad Sci U S A,
115(40), pp. E9298–E9307.
78. WHO (2018), "Cancer burden rises to 18.1 million new cases and 9.6
million cancer deaths in 2018". The Global Cancer Observatory.
79. WHO (2019), "VietNam sourcer: Globocan 2018", The Global Cancer
Observatory.
80. Wang LS, JL, ZWZ, et al. (2019), "The Chinese Society of Clinical
Oncology (CSCO): clinical guidelines for the diagnosis and treatment
of gastric cancer", Cancer Communications, 39 (10), pp. 1-31.
81. Wei Xu , Bisrat G. Debeb , Lara Lacerda , Jessica Li and Wendy A.
Woodward. (2011), "Tetrandrine, a Compound Common in Chinese
Traditional Medicine, Preferentially Kills Breast Cancer Tumor Initiating
Cells (TICs) In Vitro", Cancers (Basel), 3(2), pp. 2274–2285.
82. Wen-Shih Huang, Yi-Hung Kuo, Hsing-Chun Kuo, Meng-Chiao Hsieh, Cheng-Yi Huang, Ko-Chao Lee, Kam-Fai Lee, Chien-Heng Shen, Shui-Yi
Tung, and Chih-Chuan Teng. (2017), "CIL-102-Induced Cell Cycle Arrest
and Apoptosis in Colorectal Cancer Cells via Upregulation of P21 and
GADD45", PLoS One, 12(1), pp. e0168989.
83. Wen P, Zhang XM, Yang Z, Wang NL, Yao XS. (2008), ¨Four new
triterpenoid saponins from Ardisia gigantifolia Stapf. and their cytotoxic
activity¨, J. Asian Nat Prod Res, 10(9-10), pp. 873-880.
84. Xu L, Qu YH, Chu XD, et al. (2015), "Urinary levels of N-nitroso
compounds in relation to risk of gastric cancer: findings from the shanghai
cohort study", PLoS One, 10 (2), pp. e0117326.
85. Ying Zhang, Stephanie M. Cabarcas, Ji zheng, Lei sun, Lesley A.
Mathews, Xiaohu Zhang, Hongsheng Lin, And William L. Farrar. (2016),
“Cryptotanshinone targets tumor-initiating cells through down-regulation
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
of stemness genes expression”, Oncol Lett, 11(6), pp. 3803–3812.
54
86. Zhen-Fei Wang, Da-Guang Ma, Zhe Zhu, Yong-Ping Mu, Yong-Yan
Yang, Li Feng, Hao Yang, Jun-Qing Liang, Yong-Yan Liu, Li Liu,
and Hai-Wen Lu. (2017), "Astragaloside IV inhibits pathological functions
of gastric cancer-associated fibroblasts", World J Gastroenterol, 23(48),
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN http://lrc.tnu.edu.vn
pp. 8512–8525.