Tóm tắt Luận án Tiến sĩ Hóa học: Nghiên cứu phân tích thành phần, cấu trúc hóa học của fucoidan có hoạt tính sinh học từ một số loài rong nâu ở vịnh Nha Trang

Chia sẻ: Na Na | Ngày: | Loại File: PDF | Số trang:24

Thêm vào BST

Báo xấu

65
lượt xem 9
download

Download Vui lòng tải xuống để xem tài liệu đầy đủ

Luận án nhằm hoàn chỉnh thêm những nghiên cứu về fucoidan của rong nâu Việt Nam theo định hướng tìm kiếm những nguồn dược liệu mới phục vụ sức khỏe cộng đồng và phát triển kinh tế xã hội. Sau đây là bản tóm tắt của luận án.

Chủ đề:

Bình luận(0) Đăng nhập để gửi bình luận!

Lưu

Nội dung Text: Tóm tắt Luận án Tiến sĩ Hóa học: Nghiên cứu phân tích thành phần, cấu trúc hóa học của fucoidan có hoạt tính sinh học từ một số loài rong nâu ở vịnh Nha Trang

1 I. GIỚI THIỆU LUẬN ÁN I.1. Đặt vấn đề Fucoidan là một sulfate polysacarit chỉ có trong thành phần của ngành rong nâu mà không có trong thành phần của các loài thực vật hay động vật khác. Fucoidan có cấu trúc hóa học phức tạp bởi tính đa dạng của liên kết glycoside và khả năng phân nhánh với các vị trí nhóm sulfate được sắp xếp không theo quy luật trên mạch polymer. Thành phần chính của fucoidan là fucose và sulfate, ngoài ra chúng còn có thêm các gốc đường khác như galactose, glucose, manose, xylose,…và đôi khi là cả gốc acetyl. Nhờ sự đa dạng về cấu trúc mà fucoidan sở hữu nhiều hoạt tinh sinh học quý như kháng đông tụ máu, kháng ung thư, kháng viêm, kháng virút, chống oxi hóa,… với tiềm năng ứng dụng rất lớn trong các lĩnh vực mỹ phẩm, thực phẩm chức năng và dược phẩm. Mặc dù có rất nhiều công trình nghiên cứu nhằm xác định cấu trúc chi tiết của fucoidan, nhưng các kết quả nghiên cứu phát hiện được tính quy luật trong cấu trúc của chúng về trật tự liên kết giữa các gốc đường, sự phân nhánh và vị trí các gốc sulfate vẫn còn rất hạn chế. Mặt khác, mối quan hệ giữa cấu trúc và hoạt tính sinh học của fucoidan thực tế cho đến nay vẫn chưa được sáng tỏ. Để giúp cho việc nghiên cứu cơ chế tác dụng của fucoidan lên các tế bào sinh vật và tiến tới sử dụng fucoidan để làm dược liệu thì việc xác định chính xác thành phần và cấu trúc hóa học của fucoidan là điều tiên quyết và đang thu hút sự chú ý của nhiều nhà khoa học trên thế giới. Ở nước ta hiện tại đã có khoảng 147 loài rong nâu được phân loại, trong đó các loài rong thuộc chi Sargassum có trữ lượng lớn nhất với hơn 60 loài và sản lượng ước tính đạt tới 10.000 tấn rong khô/năm. Tuy nhiên cho đến nay ở nước ta vẫn chưa có một công trình nghiên cứu có tính hệ thống về thành phần hóa học, cấu trúc và hoạt tính sinh học của fucoidan từ rong nâu Việt Nam. Do vậy, chúng tôi chọn đề tài: “Nghiên cứu phân tích thành phần, cấu trúc hóa học của fucoidan có hoạt tính sinh học từ một số loài rong nâu ở vịnh Nha Trang” nhằm hoàn chỉnh thêm những nghiên cứu về fucoidan của rong nâu Việt Nam theo định hướng tìm kiếm những nguồn dược liệu mới phục vụ sức khỏe cộng đồng và phát triển kinh tế xã hội. I.2. Mục tiêu của luận án Nghiên cứu chiết tách và phân đoạn fucoidan từ một số loài rong nâu Việt Nam. Phân tích thành phần, xác định đặc điểm cấu trúc và mối quan hệ giữa cấu trúc với hoạt tính sinh học của fucoidan.
2 I.3. Những đóng góp mới của luận án 1/ Việc khử trùng ngưng được thực hiện bằng phương pháp tự thủy phân (autohydrolysis) sử dụng chính các nhóm (-SO3H) của phân tử fucoidan làm nguồn axít để chuyển hóa fucoidan polysacarit về dạng fucoidan oligosacarit dưới điều kiện rất nhẹ nhàng, nên hạn chế tối đa quá trình bẻ ngắn mạch quá mức về dạng các monomer không mong muốn. Nhờ vậy đã thu được các sản phẩm fucoidan oligosacarit phù hợp cho phân tích khối phổ. 2/ Lần đầu tiên tại Việt Nam đã kết hợp cả 02 kỹ thuật phân tích khối phổ nhiều lần MALDI-TOF/MS/MS và ESI-MS/MS trong phân tích cấu trúc của polysacarit. Việc kết hợp này giúp chúng ta nhận được đầy đủ hơn các thông tin về cơ chế phân mảnh các ion carbohydrate trong phổ khối, nhờ vậy đã cho phép giải được một cách tường minh cấu trúc phức tạp của fucoidan có nguồn ngốc từ rong nâu Việt Nam 3/ Lần đầu tiên cấu trúc của phân đoạn fucoidan SmF3 có hoạt tính gây độc tế bào ung thư từ rong S. mcclurei đã được thiết lập. Mạch chính của fucoidan SmF3 gồm →3)-Fucp(4,2SO3-)-(1→3)-Fucp(4,2SO3-)-(1→ họa tiết xen vào các gốc (1→4)-Fucp(3SO3-) và (→6)-Galp ở cuối đầu khử. 4/ Tất cả các phân đoạn fucoidan từ Sargassum mcclurei ít gây độc tế bào và ức chế sự hình thành các tế bào ung thư kết tràng DLD-1, chính vì vậy chúng là các tác nhân kháng ung thư tiềm năng I.4. Bố cục của luận án Luận án gồm 113 trang: Mở đầu (02 trang), Nội dung chính gồm 98 trang được chia làm 03 chương gồm: Chương 1. Tổng quan (33 trang), Chương 2. Đối tương, phương pháp nghiên cứu và thực nghiệm (11 trang), Chương 3. Kết quả và thảo luận (52 trang), Kết luận và kiến nghị (2 trang), Danh mục các công trình công bố có liên quan đến luận án (01 trang), 143 tài liệu tham khảo (12 trang). II. NỘI DUNG CỦA LUẬN ÁN MỞ ĐẦU Phần mở đầu đề cập tính thực tiễn, ý nghĩa khoa học, đối tượng nghiên cứu, mục tiêu và nhiệm vụ của luận án. CHƯƠNG 1. TỔNG QUAN Giới thiệu sơ lược về phân bố và phân loại rong nâu trên thế giới và ở Việt Nam Giới thiệu về fucoidan, tình hình nghiên cứu cấu trúc, hoạt tính sinh học và ứng dụng của fucoidan từ rong nâu trên thế giới và ở Việt Nam. Các phương pháp chiết tách và phân tích cấu trúc của fucoidan.
3 CHƯƠNG 2. ĐỐI TƯỢNG, PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU VÀ THỰC NGHIỆM 2.1. Đối tượng nghiên cứu Đối tượng được lựa chọn nghiên cứu là 08 loài rong nâu phổ biến và có trữ lượng lớn nhất ở vùng biển vịnh Nha Trang bao gồm các loài rong Sargassum denticapum, Sargassum polycystum, Sargassum binderi, Sargassum oligocystum, Sargassum swartzii, Sargassum mcclurei, Turbinaria ornata, Padina australis, các mẫu rong được thu thập, phân loại và định danh bởi chuyên gia phân loài rong biển TS. Lê Như Hậu. 2.2. Phương pháp nghiên cứu 2.2.1. Phương pháp chiết tách và phân đoạn tinh chế fucoidan từ rong nâu: fucoidan được thu nhận bằng cách chiết rong trong dung môi axit loãng (pH: 2-3), sau đó sử dụng phương pháp sắc ký trao đổi anion để tách phân đoạn tinh chế fucoidan. 2.2.2. Các phương pháp phân tích thành phần của fucoidan: phương pháp trắc quang, đo độ đục và phương pháp sắc ký lỏng hiệu năng cao (HPLC). 2.2.3. Các phương pháp phân tích cấu trúc của fucoidan: phân tích liên kết bằng methyl hóa, phân tích phổ hồng ngoại (IR), phổ cộng hưởng từ hạt nhân (1H-NMR, 13C-NMR), phổ khối nhiều lần Negative-ion tandem ESI-MS/MS và MAILDI-TOF/MS/MS. 2.2.4. Phương pháp thử nghiệm hoạt tính gây độc tế bào của fucoidan: được thực hiện theo phương pháp của Likhitwitaywid và Colburn 2.3. Thực nghiệm 2.3.1. Phương pháp chiết và tách phân đoạn fucoidan từ rong nâu Phương pháp chiết fucoidan: Fucoidan được thu nhận bằng cách chiết rong trong dung môi axit HCl loãng (pH: 2-3) ở 70oC, trong thời gian 2 giời (chiết lặp lại 3 lần). Dịch chiết được gom lại và cô đặc bằng màng siêu lọc 10kDa, dịch chiết sau đó được kết tủa trong cồn 98% hoặc đông khô để thu bột fucoidan. Phương pháp tách phân đoạn fucoidan: Fucoidan sau khi được phân lập từ rong nâu sẽ được tiến hành tách phân đoạn tinh chế bằng sắc ký trao đổi anion trên cột DEAE-cellulose. 2.3.2. Các phương pháp phân tích thành phần của fucoidan Phân tích hàm lượng tổng carbohydrate: được thực hiện bằng phương pháp so màu với phenol và axit sulfuric đậm đặc, ở λ = 490 nm. Phân tích thành phần đường đơn: được thực hiện bằng sắc ký lỏng hiệu năng cao (HPLC), sau khi fucoidan được thủy phân bằng trifluoroacetic axít.
4 Phân tích hàm lượng sulfate: được thực hiện bằng phương pháp đo độ đục với BaCl2/gelatin, ở bước sóng λ = 360 nm Phân tích hàm lượng axít uronic: được thực hiện bằng phương pháp so màu với thuốc thử Carbazol, ở bước sóng λ = 525 nm. 2.3.3. Các phương pháp phân tích cấu trúc fucoidan Phân tích liên kết bằng methyl hóa: fucoidan được methyl hóa bằng methyl iodua trong dung môi dimethylsulfoxide, sau đó tiến hành thủy phân, khử mở vòng và acetyl hóa. Sản phẩm sau khi acetyl hóa được phân tích bằng GC-MS. Thủy phân tạo oligosacarit-fucoidan sử dụng cho phân tích khối phổ: được tiến hành bằng phương pháp tự thủy phân (autohydrolysis). CHƯƠNG 3. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 3.1. CHIẾT TÁCH VÀ PHÂN LẬP FUCOIDAN TỪ RONG NÂU Fucoidan từ 08 loài rong nâu thuộc 3 chi rong Sargassum, Padina và Turbina đã được chiết tách và phân tích hàm lượng (bảng 3.1). Kết quả cho thấy hàm lượng fucoidan dao động từ 0,82 % (Sargassum swartzii) đến 2,57 % (Sargassum polycystum), hàm lượng fucoidan trong hai loài rong Padina australis và Turbina ornata tương ứng là 1,93 % và 1,23 %. Như vậy, ta thấy hàm lượng fucoidan trong các loài rong thuộc các chi khác nhau là khác nhau và trong cùng một chi (Sargassum) cũng không giống nhau. Sự khác nhau về hàm lượng fucoidan trong các loài rong có thể được giải thích là do ảnh hưởng của các yếu tố sinh trưởng của rong như vị trí địa lý, thời gian thu rong và cả phương pháp chiết. Bảng 3.1. Hàm lượng và thành phần monosacarit của fucoidan từ 08 loài rong nâu Việt Nam Stt Loài rong Hàm lượng Thành phần đường đơn của fucoidan SO42- Axít fucoidan (% mol) % uronic %* Fuc Man Gal Xyl Glc w/w** % w/w** 1 S.swartzii 0,82 35,8 19,2 32,3 9,9 2,8 20,40 14,28 2 S.oligocystum 1,78 42,3 8,9 38,3 7,1 3,4 22,46 21,54 3 S.denticapum 2,00 40,1 15,9 38,7 5,3 nd 25,69 21,20 4 S.mcclurei 2,37 38,5 4,2 33,1 3,6 20,6 33,15 17,87 5 S.polycystum 2,57 42,4 12,6 23,5 1,3 10,2 25,60 23,74 6 S.binderi 1,13 42,2 10,3 38,0 9,5 nd 21,47 5,35 7 Turbina ornata 1,23 55,8 9,2 24,8 9,0 1,2 25,30 7,50 8 Padina australis 1,93 47,1 2,5 22,3 11,5 16,6 21,90 21,02 * Hàm lượng tính theo khối lượng rong khô đã loại chất béo ** Hàm lượng tính theo khối lượng của fucoidan; nd: không phát hiện thấy
5 3.2. PHÂN TÍCH THÀNH PHẦN HÓA HỌC CỦA FUCOIDAN Để xác định thành phần hóa học của fucoidan chúng tôi tiến hành thủy phân fucoidan thành các monomer trong môi trường axít. Việc thủy phân hoàn toàn để xác định thành phần các đường đơn của fucoidan trên thực tế rất khó xảy ra, do đó chúng tôi tiến hành xác định theo tỉ lệ mol giữa các gốc đường đã được thủy phân. Sắc ký đồ của các mẫu đường chuẩn được trình bày trên hình 3.1. Kết quả phân tích thành phần monosacarit, hàm lượng sulfate và uronic axít của các mẫu fucoidan được trình bày trên bảng 3.1 Hình 3.1. Sắc ký đồ HPLC của các mẫu đường đơn chuẩn Kết quả bảng 3.1 cho thấy fucose chiếm hàm lượng đáng kể từ 35,8-55,8 % trong tất cả các mẫu fucoidan, trong đó cao nhất là fucoidan từ rong Turbina ornata (55,8%) và thấp nhất là fucoidan từ rong S.swartzii (35,8%). Hàm lượng galactose của fucoidan chiết từ các loài rong thuộc chi Sargassum chiếm tỉ lệ gần bằng hàm lượng fucose, ngoại trừ fucoidan từ rong S.polycystum có tỉ lệ fucose:galactose = 2:1. Trong khi đó, các mẫu fucoidan từ hai chi rong khác là Turbina ornata và Padina australis cũng giống như fucoidan của loài rong S.polycystum hàm lượng galactose chiếm gần bằng một nửa so với fucose. Ngoài hai thành phần chính là fucose và galactose, tất cả các mẫu fucoidan của 08 loài rong nghiên cứu đều có chứa các đường đơn khác với hàm lượng nhỏ hơn là mannose (2,5-19,2%), xylose (1,3-11,5%) và glucose (0-20,6%). Hàm lượng các gốc đường này biến đổi theo từng chi rong và từng loài rong, tuy nhiên trong cùng chi rong chúng biến đổi không nhiều. Các kết quả này cũng hoàn toàn phù hợp với các công bố trước đó về sự đa dạng của thành phần hóa học của fucoidan. Bên cạnh thành phần là các gốc
6 đường, trong phân tử của fucoidan còn chứa các gốc sulfate và axít uronic. Hàm lượng sulfate của các mẫu fucoidan khác nhau không nhiều (bảng 3.1), dao động trong khoảng 20,40-33,15%, trong đó lớn nhất là fucoidan của rong S.mcclurei (33,15%) và nhỏ nhất là fucoidan từ rong S.swartzii (20,40%), Do sự phức tạp trong thành phần cũng như cấu trúc, nên việc xác định các đặc trưng cấu trúc của fucoidan là hết sức khó khăn. Phân đoạn tinh chế fucoidan là một bước quan trọng làm đơn giản hóa việc phân tích các đặc trưng cấu của chúng. 3.3. TÁCH PHÂN ĐOẠN VÀ PHÂN TÍCH THÀNH PHẦN CỦA CÁC PHÂN ĐOẠN FUCOIDAN 05 loại fucoidan được phân lập từ các loài rong Sargassum swartzii, Sargassum mcclurei, Sargassum polycystum, Sargassum denticapum và Turbina ornata được chúng tôi lựa chọn để tiến hành phân đoạn và phân tích các đặc trưng cấu trúc của chúng. Vì đây là những loài rong phổ biến, có trữ lượng lớn và có khả năng khai thác ở quy mô công nghiệp. Kết quả phân đoạn tinh chế các mẫu fucoidan bằng sắc ký trao đổi anion trên cột DEAE-cellulose (3,2x32 cm) được chỉ ra trên hình 3.2- hình 3.6. Kết quả tách phân đoạn của các mẫu fucoidan cho thấy fucoidan từ các loài rong S.denticapum, S.polycystum và S.mcclurei đều thu được 03 phân đoạn khác nhau. Kết quả này cho thấy fucoidan từ mỗi loài rong này sẽ tồn tại ít nhất 03 kiểu cấu trúc khác nhau. Trong khi đó fucoidan từ hai loài rong Turbinaria ornata và S.swartzii lần lượt thu được 04 và 05 phân đoạn khác nhau, như vậy fucoidan từ hai loài rong này cũng sẽ tồn tại ít nhất là 04 và 05 dạng cấu trúc khác nhau. Tuy nhiên, các phân đoạn tương ứng với mỗi loài rong được rửa giải ra ở các nồng độ muối NaCl khác nhau, như vậy có thể đặc điểm cấu trúc của các phân đoạn tương ứng với mỗi loài rong sẽ không giống nhau. Kết quả phân tích thành phần hóa học của mỗi phân đoạn fucoidan từ 05 loài rong nghiên cứu ở trên (bảng 3.2-3.6) cho thấy thành phần hóa học của các phân đoạn fucoidan giữa các loài rong là khác nhau và trong cùng một loại rong cũng khác nhau. Tuy nhiên, chúng đều có đặc điểm chung là hàm lượng sulfate trong các phân đoạn fucoidan tăng dần theo nồng độ rửa giải của muối NaCl, hàm lượng fucose và galactose tăng tỉ lệ nghịch với hàm lượng của các gốc đường khác, đặc biệt trong phân đoạn SmF3 từ rong S.mcclurei chỉ tồn tại hai gốc đường là fucose và galactose. Như vậy với phần chính là fucose, galactose và sulfate fucoidan từ 05 loài rong trên được xếp vào nhóm các sulfated galactofucan, khác với các sulfate fucan từ rong ôn đới
7 1,4 SdF1 2 0,12 SwF2 SwF2 2 1,2 SwF3 0,1 1 SdF3 1,5 1,5 SdF2 0,08 SwF1 SwF4 SwF5 DO, 490nm DO, 490nm NaCl, M NaCl, M 0,8 1 0,06 1 0,6 0,04 0,4 0,5 0,5 0,2 0,02 0 0 0 0 0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 V, ml V, ml Hình 3.2. Tách phân đoạn fucoidan từ rong Hình 3.3. Tách phân đoạn fucoidan từ rong S.denticapum bằng sắc ký trao đổi anion trên S.swartzii bằng sắc ký trao đổi anion trên cột DEAE-cellulose cột DEAE-cellulose 3 2 0,3 2 SpF2 SmF2 2,5 0,25 SpF1 1,5 1,5 SpF3 SmF1 SmF3 2 0,2 A, 490nm A 490nm NaCl, M NaCl, M 1,5 1 0,15 1 1 0,1 0,5 0,5 0,5 0,05 0 0 0 0 0 100 200 300 400 500 600 700 0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 V, ml V (ml) Hình 3.4. Tách phân đoạn fucoidan từ Hình 3.5. Tách phân đoạn fucoidan từ rong S.polycystum bằng sắc ký trao đổi rong S.mcclurei bằng sắc ký trao đổi anion trên cột DEAE-cellulose anion trên cột DEAE-Macroprep 1,4 2 ToF3 1,2 ToF2 1,5 1 ToF4 ToF1 A, 490nm NaCl, N 0,8 1 0,6 0,4 0,5 Hình 3.6. Tách phân đoạn fucoidan từ rong 0,2 Turbinaria ornata bằng sắc ký trao đổi 0 0 100 200 300 400 500 600 700 800 0 anion trên cột DEAE-cellulose V, ml Bảng 3.2. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan từ rong S.denticapum thu được bằng sắc ký trao đổi anion Phân đoạn Hàm Tổng SO42- Thành phần monosacarit , fucoidan lượng carbohydrate (%)* mol% (%)* (%)* Fuc Man Gal Xyl SdF1-0,5М NaCl 17,2 48,04 23,67 38,6 22,1 24,6 14,7 SdF2-1,0М NaCl 45,7 54,12 27,64 48,6 12,8 28,2 10,4 SdF3-1,5М NaCl 15,3 54,09 39,14 51,9 5,8 33,4 8,9 *: tính theo khối lượng của fucoidan
8 Bảng 3.3. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan từ rong S.swartzii thu được bằng sắc ký trao đổi anion Phân đoạn Hàm SO42- Thành phần monosacarit, mol% fucoidan theo lượng (%) nồng độ NaCl Fuc Man Gal Xyl Rham Glc (%) SwF1-0,5 М 2,0 5,6 nd nd nd nd nd nd SwF2-0,8 М 20,2 14,6 49,5 4,7 29,4 2,7 2,7 3,0 SwF3-1,0 М 33,3 18,4 56,0 3,0 28,9 1,9 1,9 3,2 SwF4-1,2 М 26,2 28,0 55,6 3,6 27,9 2,4 3,3 2,8 SwF5-1,5 М 16,0 42,3 57,1 4,0 27,4 0,9 2,0 2,0 nd: không phát hiện thấy Bảng 3.4: Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan từ rong S.polycystum thu được bằng sắc ký trao đổi anion Phân đoạn Hàm Tổng SO42- Thành phần monosacarit của fucoidan, fucoidan lượng carbohydrate (%) % mol theo nồng (%) (%) Fuc Man Gal Xyl Rham Glc độ NaCl SpF1-0,5М 18,3 56,43 20,11 28,0 26,7 12,7 11,3 13,1 8,2 SpF2-1,0М 43,2 59,15 25,67 59,2 6,0 26,6 0,2 8,0 nd SpF3-1,5М 21,0 54,97 33,99 68,6 nd 26,9 4,5 nd nd Bảng 3.5. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan từ rong S.mcclurei thu được bằng sắc ký trao đổi anion Phân đoạn Hàm Tổng SO42- Thành phần monosacarit, % mol fucoidan lượng carbohydrate (%)* (%)* Fuc Man Gal Xyl Gluc theo nồng (%)* độ NaCl SmF1-0,8M 8,4 44,65 16,8 27,2 34,0 19,6 6,4 12,8 SmF2-1,2M 18,2 64,59 25,7 44,8 5,4 34,1 5,3 10,4 SmF3-1,6M 10,5 55,62 35,0 58,5 nd 41,5 nd nd Bảng 3.6. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan từ rong Turbina ornata thu được bằng sắc ký trao đổi anion Phân đoạn fucoidan Hàm SO42- Thành phần monosacarit , mol% theo nồng độ NaCl lượng (%) (%) Fuc Man Gal Rham ToF1-1,15 М 6,6 23,87 71,9 4,5 23,6 nd ToF2-1,25 М 29,7 43,26 69,6 nd 27,7 2,7 ToF3-1,50 М 10,3 38,75 82,1 2,4 9,4 6,1 ToF4-1,80 М 18,4 32.36 75,6 2,9 18,8 2,7
9 Theo các tài liệu đã công bố, fucoidan rong nâu nói chung và galactofucan sulfate hóa nói riêng sở hữu phổ hoạt tính sinh học rất rộng và đa dạng như hoạt tính kháng ung thư, kháng đông tụ máu, kháng vi rút,.... Do vậy, trước khi tiếp tục nghiên cứu sâu hơn về các đặc trưng cấu trúc của fucoidan rong nâu Việt Nam nhằm mục đích ứng dụng chúng làm thực phẩm chắc năng và dược liệu. Chúng tôi tiến hành khảo sát hoạt tính ức chế một số dòng tế bào ung thư người. 3.4. HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA FUCOIDAN 3.4.1. Hoạt tính gây độc tế bào ung thư của fucoidan Fucoidan từ 06 loài rong S.mcclurei (F-Sm), S.polycystum (F-Sp), S.swartzii (F-Ss), S.denticapum (F-Sd), S.oligocystum (F-So) và Turbinaria ornata (F-To) được chúng tôi lựa chọn thử nghiệm hoạt tính gây độc tế bào trên 05 dòng ung thư của người là ung thư gan (Hep-G2), ung thư màng tim (RD), ung thư phổi (LU), ung thư ruột kết (DLD-1) và ung thư vú (MDA-MB-231). Thí nghiệm được thực hiện tại Viện Hóa học các Hợp chất thiên nhiên-Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam, Viện Hóa sinh Hữu cơ Thái Bình Dương - Nga và Viện Sinh học và Công nghệ sinh học - Hàn Quốc. Kết quả cho thấy tất cả các mẫu fucoidan thử nghiệm đều cho kết quả dương tính với ít nhất 02 dòng tế bào ung thư, trong đó fucoidan từ rong S.swartzii cho kết quả dương tính trên 04 dòng tế bào ung thư (bảng 3.7 và 3.8). Bảng 3.7. Hoạt tính gây độc tế bào của fucoidan từ 06 loài rong nâu của Việt Nam Fucoidan Dòng tế bào ung thư của người Kết luận Hep-G2 RD MDA-MB- LU DLD-1 231 F-Sp + + nd nd nd Dương tính 02 dòng F-Sm + - nd nd + Dương tính 02 dòng F-So + + nd nd nd Dương tính 02 dòng F-Ss + + + + - Dương tính 04 dòng F-Sd + + nd nd - Dương tính 02 dòng F-To + + nd nd nd Dương tính 02 dòng
10 Bảng 3.8. Giá trị IC50 của các mẫu fucoidan có hoạt tính gây độc tế bào Giá trị IC50 (µg/ml) Fucoidan Dòng tế bào Kết luận Hep- MDA- RD LU DLD-1 G2 MB-231 Chứng (+) 0,25 0,1 0,32 0,1 0,2 F-Sp 4,5 7,1 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng F-Sm 2,4 20,0 CXĐ 6,5 CXĐ Dương tính 02 dòng F-So 18,5 10,4 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng F-Ss 3,8 16,7 15,5 CXĐ 5,4 Dương tính 04 dòng F-Sd 8,1 15,4 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng F-To 12,8 10,9 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng 3.4.2. Hoạt tính gây độc tế bào của các phân đoạn fucoidan được phân lập từ rong Sargassum swartzii và Sargassum mcclurei Trong số 06 mẫu fucoidan được thử nghiêm hoạt tính gây độc tế bào ở trên, chúng tôi lựa chon các phân đoạn của fucoidan từ S.swartzii và S.mcclurei tiếp tục thử nghiệm với dòng tế bào ung thư vú và ung thư ruột kết. Kết quả cho thấy tất cả các phân đoạn thử nghiệm đều cho kết quả dương tính với các mức độ ức chế khác nhau (hình 3.7 và 3.8). Như vậy có thể thấy hoạt tính sinh học của fucoidan phụ thuộc vào các yếu tố đặc trưng cấu trúc của fucoidan 120 Sự ức chế phát triển tế bào, % 100 5 μg/ml 80 0,5 μg/ml 60 40 20 0 Đối chứng SwF1 SwF2 SwF3 SwF4 SwF5 Nồng độ các phân đoạn fucoidan Hình 3.7. Hoạt tính gây độc tế bào ung thư vú MDA-MB-231 của các phân đoạn fucoidan từ rong Sargassum swartzii
11 SmF1 SmF2 SmF3 Đối chứng (100 μg/ml) (100 μg/ml) (100 μg/ml) SmF3-DS (100 μg/ml) Hình 3.8: Hiệu quả ức chế sự phát triển tế bào ung thư kết tràng DLD-1 của các phân đoạn fucoidan được chiết tách từ rong Sargassum mcclurei 3.5 . ĐẶC TRƯNG CẤU TRÚC CỦA CÁC PHÂN ĐOẠN FUCOIDAN 3.5.1. Các đặc trưng cấu trúc thu được từ phổ IR Các phân đoạn SdF3, SwF5, SpF3, SmF3 và ToF2 từ 05 loài rong có hoạt tính sinh học tốt, đồng thời có thành phần đường đơn giản nhất so với các phân đoạn fucoidan còn lại được lựa chọn để phân tích các đặc trưng cấu trúc. Kết quả phân tích phổ hồng ngoại của các phân đoạn fucoidan đều thu được những dải hấp thụ chính ở số sóng từ 1240- 1272cm-1 cho thấy sự có mặt của nhóm sulfate. Ngoài ra, các dao động hấp thụ trong vùng số sóng từ 800-845 cm-1 cho biết vị trí của nhóm sulfate trên các gốc đường pyrannose (bảng 3.9). Bảng 3.9. Một số vân phổ đặc trưng trong phổ hồng ngoại của fucoidan được chiết tách từ một số loài rong nâu Việt Nam Mẫu Số sóng dao động Vị trí nhóm sulfate đặc trưng (cm-1) SdF3 847,90 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C4 SpF3 835,40 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C4 SwF5 803,77 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C2 và/hoặc C3 SmF3 839,22 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C4 ToF2 820,00 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C2 và/hoặc C3
12 3.5.2. Các đặc trưng cấu trúc thu được từ phổ NMR * Phổ 13C-NMR: Giống như nhiều fucoidan rong nâu khác trên thế giới đã được công bố, fucoidan rong nâu ở Việt Nam cũng có phổ 13C-NMR rất phức tạp với nhiều vùng tín hiệu trùng lặp chồng lấn nhau do trong phân tử của chúng được cấu tạo bởi các gốc đường fucose (C6H12O5) và hexose (C6H12O6) khác nhau, điều này rất khó để giải thích được một cách đầy đủ về cấu trúc của chúng. Tuy nhiên, trên phổ 13C-NMR của tất cả các phân đoạn fucoidan đều có những đặc điểm chung để nhận biết fucoidan thông qua các tín hiệu của gốc α-L-Fucp đó là những tín hiệu mạnh xuất hiện trong vùng trường cao 15-18 ppm đặc trưng cho nhóm metyl (CH3-) và các tín hiệu trong vùng trường thấp 97-102 ppm đặc trưng cho cacbon α-anomeric (C1) của gốc đường 1→3)-α-L-fucopyranose, vùng tín hiệu 67-86 ppm là vùng của cacbon C2-C5 của vòng pyranoid. Bên cạnh đó, phổ 13C-NMR cũng cho thấy sự có mặt của gốc đường β-D-Galactose thông qua các tín hiệu đặc trưng cho cacbon C6 không liên kết và cacbon C1 của gốc β-D-Galactose tương ứng ở độ dịch chuyển hóa học trong vùng 61-62 ppm và 103-104 ppm. Ngoài ra, các tín hiệu ở độ dịch chuyển hóa học 20,9 ppm và vùng (173-175 ppm) trên phổ 13C-NMR của các phân đoạn SpF3 và SwF5 còn chỉ ra sự có mặt của nhóm O-acetyl trong phân tử của hai loại fucoidan này. α-L-Fucp-C6 α-L-Fucp C2-C5 α-(1,3)-L-Fucp-C1 β-D-Gal-C6 β-D-Gal-C1 Hình 3.11. Phổ 13C-NMR của phân đoạn fucoidan SdF3 từ S.denticapum * Phổ cộng hưởng từ hạt nhân 1H-NMR: Phổ cộng hưởng từ hạt nhân 1H-NMR của các polysacarit nói chung và của fucoidan nói riêng đều hết sức phức tạp, độ phân giải không cao với rất nhiều pic trùng chập và chen lấn nhau. Vì vậy, rất khó để giải
13 thích thỏa đáng tất cả các tín hiệu trên phổ này. Mặc dù vậy, cũng giống như các loại fucoidan đã được công bố trước đó, trên phổ 1H-NMR của cả 05 phân đoạn fucoidan SdF3, SpF3, SmF3, SwF5 và ToF2 đều xuất hiện những tín hiệu mạnh ở vùng trường cao 1,2-1,8 ppm đặc trưng cho proton H6 của nhóm methyl vòng fucose và các tín hiệu xuất hiện trong vùng 4,9-5,2 ppm đặc trưng cho proton H1 của vòng 1→3)-α-L-fucopyranose. Bên cạnh đó trên phổ 1H-NMR cũng xác nhận sự có mặt của gốc galactose thông qua các tín hiệu ở độ dịch chuyển hóa học 3,1-3,3 ppm và 5,3-5,4 ppm đặc trưng cho proton H6 và H1 của vòng β-D-Galactose. Ngoài ra, trên phổ của các phân đoạn SdF3, SwF5, SpF3 và ToF2 còn xuất hiện nhóm tín hiệu trong vùng 2,1-2,3 ppm cho thấy sự có mặt của nhóm O-acetyl. α-L-Fucp-H6 α-(1,3)-L-Fucp-H1 β-D-Galp-H6 C2-C5 β-D-Galp-H1 OAc(CH3) Hình 3.12. Phổ 1H-NMR của phân đoạn fucoidan SdF3 (S.denticapum) Như vậy, từ kết quả phân tích thành phần hóa học, phổ hồng ngoại và phổ cộng hưởng từ hạt nhân (1H-NMR và 13C-NMR) cho thấy đặc điểm cấu trúc của 05 phân đoạn fucoidan đại diện cho các loài rong S.polycystum, S.denticapum, S.mcclurei, S.swartzii và Turbinaria ornata thuộc nhóm sulfated galactofucan có cấu tạo mạch chính chủ yếu là các gốc 1→3)-α-L-Fucp, gốc β-D-Galp có thể tồn tại ở mạch chính và/hoặc ở mạch nhánh. Chính vì sự phức tạp trong thành phần cũng như cấu trúc mạch nhánh, nên việc phân tích cấu trúc chi tiết của fucoidan là vô cùng khó khăn. Do vậy, phân đoạn fucoidan SmF3 từ rong S.mcclurei là phân đoạn có hoạt tính sinh học tốt và có thành phần hóa học đơn gian nhất sẽ được lựa chọn để tiếp tục nghiên cứu chi tiết hơn về cấu trúc hóa học.
14 3.6. PHÂN TÍCH CẤU TRÚC CỦA PHÂN ĐOẠN FUCOIDAN SmF3 ĐƯỢC CHIẾT TÁCH TỪ RONG NÂU SARGASSUM MCCLUREI. Theo kết quả ở mục 3.3, phân đoạn SmF3 có thành phần chính là fucose, galactose và sulfate (35%), tỉ lệ fucose:galactose ≈ 1:0,71, ngoài ra không chứa thêm các thành phần đường khác (bảng 3.5). Phổ FT-IR của phân đoạn SmF3 giúp ta nhận biết sự có mặt của nhóm sulfate thông qua các tín hiệu ở 1262,73 cm-1 (S=O) và 839,22 cm-1 (S-C-S) (hình 3.13), ngoài ra đỉnh hấp thụ ở số sóng 839,22 cm-1 còn cho biết vị trí nhóm thế sulfate trong phân tử fucoidan SmF3 ở axial (C4) chiếm ưu thế. Tuy nhiên, dữ liệu phổ hồng ngoại chỉ cho biết thông tin nhóm sulfate ở vị trí axial (C4) hay equatorial (C2 hoặc C3) của vòng pyranose nói chung mà không phân biệt được nó thuộc vòng fucose hay galactose. Vì vậy, để giải quyết vấn đề này chúng tôi sẽ tiến hành phân tích bằng phương pháp phổ cộng hưởng từ hạt nhân và phổ khối. S=O C-O-S Hình 3.13: Phổ FT-IR của fucoidan- SmF3 từ rong nâu Sargassum mcclurei Trên phổ 13C-NMR (hình 3.14) của fucoidan tự nhiên phân đoạn SmF3 các tín hiệu mạnh trong vùng trường cao 15,5-17,7 ppm và vùng anomeric 96,0-100,4 ppm đặc trưng cho C-1 và C-6 của vòng α-L-fucose. Các tín hiệu ở 102,7 ppm, 61,7 và 67,0 ppm lần lượt đặc trưng cho cacbon C-1, C-6 tự do và C-6 có liên kết của gốc β-D-galactose. Tổ hợp phức tạp các tín hiệu trong vùng 67,8-85,0 ppm là của cacbon vòng pyranose C2-C5. Ngoài ra không phát hiện thấy các tín hiệu chứng tỏ sự có mặt của các nhóm acetat và axít uronic trong phân tử fucoidan SmF3. Sự phức tạp của phổ 1H-NMR phân đoạn fucoidan SmF3 cũng tương tự như các loại fucoidan khác đã công bố, nên việc giải thích thỏa
15 đáng các tín hiệu trên phổ này là điều không thể. Tuy nhiên, một phần thông tin về đặc trưng cấu trúc của fucoidan vẫn có thể thu nhận được từ phổ 1H-NMR thông qua các tín hiệu đặc trưng của gốc đường fucose và galactose. Đó là các tín hiệu mạnh trong vùng trường cao 1,2-1,4 ppm của proton H6 (nhóm methyl) và vùng 5,2-5,3 ppm thuộc về proton H1(α-anomeric) của gốc 1→3)-α-L-Fucp, tín hiệu nhỏ hơn ở 5,0 ppm là H1 của gốc 1→4)-α-L-Fucp. Bên cạnh đó, các tín hiệu đặc trưng cho proton H6 và H1 của gốc β-D-galactose được xác nhận thông qua các tín hiệu ở độ dịch chuyển hóa học 3,7 ppm và 5,4 ppm. α-L-Fucp-C6 C2-C5 α-(1,3)-L-Fucp β-D-Galp-C6 β-D-Galp-C1 Hình 3.14: Phổ 13C-NMR của fucoidan- SmF3 từ rong Sargassum mcclurei * Khử sulfate Khử sulfate được thực hiện nhằm mục đích làm đơn giản hóa cấu trúc của fucoidan phân đoạn SmF3. Kết quả đo phổ 13C-NMR của fucoidan đề sulfate hóa SmF3-Ds cho thấy tín hiệu đặc trưng của cacbon C-6 không liên kết của gốc β-D-Galactose ở 61,7 ppm đã tăng lên đáng kể so với trước khi được khử sulfate, điều này chỉ ra nhóm sulfated có thể tồn tại ở vị trí C-6 của một số gốc galactose. * Phân tích liên kết bằng phương pháp methyl hóa Kết quả phân tích liên kết bằng methyl hóa của fucoidan SmF3 (bảng 3.10) cho thấy chủ yếu là các gốc fucose liên kết 3 (46%), cùng với một lượng ít hơn các gốc galactose liên kết 4 (18%), fucose liên kết 4 chiếm 12% và galactose liên kết 6 chỉ có 2%. Fucoidan SmF3 có chứa các gốc fucose và galactose ở đầu mạch không khử nhưng nó chỉ có gốc galactose liên kết (1→6) ở cuối mạch khử.
16 Việc phát hiện các gốc 3,4- và 2,4-di-O-methyl-galactitol cho thấy nhóm sulfate ở vị trí C2/C3 và/hoặc C4 của gốc galactose và/hoặc gốc galactose tồn tại ở mạch nhánh. Bảng 3.10. Phân tích methyl hóa của fucoidan đề sulfate hóa SmF3-DS. Thành phần các gốc đường mol Dạng liên kết (methylated fucitol hoặc % galactitol acetate) 2,3,4-tri-O-methyl-fucitol 5 Fuc1→ 2,3-di-O-methyl-fucitol 12 →4Fuc1→ 2,4-di-O-methyl-fucitol 46 →3Fuc1→ 2,3,4,6-tetra-O-methyl-galactitol 8 Gal1→ 2,3,6-tri-O-methyl-galactitol 18 →4Gal1→ 2,3,4-tri-O-methyl-galactitol 2 →6Gal1→ 3,4-di-O-methyl-galactitol 1 →2,6Gal1→ 2,4-di-O-methyl-galactitol 2 →3,6Gal1→ 1,2,3,4-tetra-O-methyl-galactitol 6 →6Gal Như vậy, bằng các phương pháp phân tích hóa học và phân tích phổ IR, NMR, đặc trưng cấu trúc của fucoidan SmF3 đã được xác định như sau: mạch chính được tạo nên chủ yếu bởi gốc α-L-fucose-(1→3), trong thành phần mạch chính và/hoặc mạch nhánh còn chứa các gốc α-L-fucose-(1→4); galactose-(1→4) và galactose-(1→6). Nhóm sulfate ở vị trí C2 và/hoặc C4 trên gốc đường fucose và galactose. Để khẳng định lại cấu trúc dự đoán trên và xác định trật tự liên kết giữa các gốc đường trong phân tử fucoidan SmF3, các oligofucoidan SmF3 sẽ được phân tích bằng khối phổ nhiều lần (MALDI-TOF/MS/MS và ESI-MS/MS). * Phổ khối của oligosacarit được điều chế bằng phương pháp tự thủy phân fucoidan SmF3 Hiệu suất của phân đoạn oligosacarit SmF3-AH đạt được là 85% so với SmF3. Kết quả phân tích thành phần monosacarit của phân đoạn này cho thấy hàm lượng (% mol) fucose chiếm 68,5%, hàm lượng galactose chiếm 31,5%. Kết quả phân tích thành phần monosacarit của phân đoạn trọng lượng phân tử cao thu được sau thủy phân cho thấy hàm lượng galactose giảm xuống (14,7%) và hàm lượng fucose tăng lên (85,3%). So với các kết quả thu được khi phân tích fucoidan từ các loài rong thuộc bộ Laminariales trong cùng điều kiện tự thủy phân cho thấy trong phân tử fucoidan SmF3 không chứa các đoạn mạch dài chỉ được tạo nên bởi các gốc galactose. Để chứng minh cho dự đoán này chúng tôi tiến hành phân
17 tích khối phổ nhiều lần với chế độ ion âm (negative-ion tandem MS) của các đoạn mạch ngắn nhằm xác định trật tự của các liên kết đường trong phân tử fucoidan. Phổ khối của oligofucoidan SmF3-AH được đo theo hai phương pháp là MALDI-TOF/MS/MS và ESI-MS/MS. Hình 3.15. Phổ khối MALDI-TOF chế độ ion âm của fucooligosacarit SmF3 từ rong S. mcclurei nhận được bằng tự thủy phân Kết quả đo khối phổ bằng cả hai phương pháp cho thấy tín hiệu lớn nhất là mảnh ở m/z: 243,0 của monosulfated fucose [Fuc(SO3)]- cùng với một tập hợp các ion mảnh khác như (m/z: 224,98; 387,09; 533,14; 695,15 và các mảnh ion khác) và lượng lớn các monosulfated fucooligosacarit (m/z: 389,10; 535,15; 681,16 và 827,13) (bảng 3.11). Tiếp theo lần lượt các mảnh ion chính và các mảnh oligosacarit sẽ được phân tích đặc trưng cấu trúc bằng phương pháp khối phổ nhiều lần MALDI-TOF/MS/MS và ESI-MS/MS. Cơ chế phân mảnh xảy ra theo quy tắc được đề xuất bởi Domon và Costello. Bảng 3.11. Các đặc trưng cấu trúc của một số oligosacarit nhận được từ fucoidan SmF3 của rong S. mcclurei bằng tự thủy phân m/z Thành phần/đặc trưng cấu trúc của monosacarit MALDI ESI và oligosacarit [M* - Na]- [M - nNa]n− 243,00 243,016 Fuc(4 SO3−), Fuc(2 SO3−), Fuc(3 SO3−) - 259,012 Gal(4(6) SO3−), Gal(2 SO3−) 389,10 389,077 [Fuc2(SO3)]− 405,10 405,070 Gal(2 SO3−)-(1,3)-Fuc 491,04 234,0102- Fuc(2 SO3−)-(1,3)-Fuc(2 SO3−) Fuc-(1,3)-Fuc(2,4 SO3−) Fuc(2 SO3−)-(1,4)-Fuc(2 SO3−) ** - 182,3233- Fuc(2 SO3−)-(1,4)-Fuc (2,3 SO3−) Fuc(2,4 SO3−)-(1,3)-Fuc ** - 187,6542- Gal(4/6,3 SO3−)-(1,3/4)-Fuc(2/3SO3−) Fuc(2,4 SO3−)-(1,4)-Gal(2 SO3−)
18 507,03 242,008 Gal(2 SO3−)-(1,3)-Fuc(2 SO3−) Gal(2 SO3−)-(1,3)-Fuc(2 SO3−) ** 535,15 535,136 [Fuc3(SO3)]− - 231,007 [Fuc3(SO3)]3− 551,15 - Gal(2SO3−)-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc - 236.341 [Fuc2Gal(SO3)3]3− 653,05 315,0402- [Fuc2Gal(SO3Na)2 − Na]− 681,16 - [Fuc4(SO3)]− 697,15 - [Fuc3Gal(SO3)]− 783,04 380,0742- [Fuc4(SO3Na)2 − Na]− 799,03 388,0702- [Fuc3Gal(SO3Na)2 − Na]− - 285,0283- Gal(2SO3-)-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc(SO3-)-(1,3)-Fuc(SO3-) Gal(4/6,2 SO3-)-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc(2 SO3-) Fuc-(1,4)-Gal(3SO3-)-(1,3)-Fuc(2SO3-)-(1,3)-Fuc(2SO3-) 827,13 - [Fuc5(SO3)]− 843,12 - [Fuc4Gal(SO3)]− 859,10 - [Fuc3Gal2(SO3)]− 944,97 460,0942- [Fuc4Gal(SO3Na)2 - Na]− 960,95 - [Fuc3Gal2(SO3Na)2- Na]- - 339,0513- [Fuc3Gal2(SO3)3]3− 989,05 - [Fuc5Gal(SO3)− 1005,04 - [Fuc4Gal2(SO3)]− 1062,79 338,551 [Fuc3Gal2(SO3Na)3 - Na]- 1090,87 - [Fuc5Gal(SO3Na)2 − Na]− 1106,87 541,065 [Fuc4Gal2(SO3Na)2 − Na]− *M: muối natri sulfate oligosacarit ** Các ion mảnh đặc trưng cho kiểu liên kết có cường độ thấp Trên phổ ion-âm ESI-MS/MS của mảnh monosulfated galactose [GalSO3]- ở m/z 259,02 xuất hiện hai tín hiệu chính có cường độ mạnh tương đương nhau ở số khối m/z 138,98 (0,2X) và m/z 198,99 (0,2A). Theo công bố của Tissot và cộng sự, vị trí nhóm sulfate ảnh hưởng đến cơ chế phân mảnh vòng đường. Các tín hiệu ở m/z 138,98 (0,2X) và m/z 198,99 (0,2A) đặc trưng cho vị trí nhóm sulfate ở C-2 và C-4. Kết quả đo phổ 13C- NMR của fucoidan khử sulfate SmF3-DS cho thấy tín hiệu nhóm methyl C-6 không liên kết của vòng Galactose tăng lên đáng kể so với fucoidan SmF3 trước khi được khử sulfate, điều đó chứng tỏ nhóm sulfate có thể tồn tại ở vị trí C-6 của gốc đường này. Như vậy, mảnh ở m/z 259,02 tương ứng với hai dạng cấu tạo là Gal(4/6SO3-) và Gal(2SO3-). Phổ ESI-MS/MS và MALDI-TOF/MS/MS ở chế độ ion âm của mảnh fucose monosulfate [FucSO3]- ở m/z 243,0 (hình 3.16 A,B) cũng xuất hiện các tín hiệu ở m/z 182,9 (0,2A) và m/z 138,9 (0,2X) cho thấy vị trí của nhóm sulfate ở C-4 và C-2 của gốc α-L-Fucp. Tuy nhiên, trên phổ MALDI-TOF/MS/MS tín hiệu ở m/z 182,9 cao hơn tín hiệu ở m/z 138,9 (hình 3.16 A) chỉ ra rằng gốc fucose được sulfate hóa ở vị trí C-4 nhiều
19 hơn C-2. Như vậy, phổ MS/MS của mảnh ở m/z 243,0 cho thấy nó là hỗn hợp của hai monosulfate fucose gồm Fuc(4 SO3-) và Fuc(2 SO3-). Hình 3.16. Phổ MALDI-MS/MS của mảnh [FucSO3]- ở số khối 225,0 (A) và phổ ESI-MS/MS của mảnh [FucSO3]- ở số khối 243,02 (B) Trên phổ MALDI-TOF/MS/MS của mảnh [Fuc2(SO3Na)2-Na]- ở m/z 491,0 (hình 3.17A) xuất hiện tín hiệu của các mảnh ion chính như B1 ở m/z 225,0; Y1 ở m/z 243,0 cùng với các tín hiệu nhỏ hơn gồm 0,2Xo ở m/z 138,9; 0,2A2 ở m/z 329,0 và 0,2X1 ở m/z 386,9. Cho thấy, mảnh [Fuc2(SO3Na)2-Na]- ở m/z 491,0 là hỗn hợp của hai disacarit như được trình bày trong bảng 3.11 và hình 3.17A. Phổ ESI-MS/MS của mảnh [Fuc2(SO3)3]3− tại m/z 182,33 (3.17B) thu được các tín hiệu của ion Y1’ ở m/z 160,98 tương tứng với gốc disulfated fucose ở phía đầu khử, ion B1 ở m/z 225,01 tương ứng với gốc monosulfated fucose ở đầu không khử, ion 0,2 Xo ở m/z 138,9 tương ứng với gốc sulfate ở vị trí C-2, ion 2,4A2 ở m/z 181,99 được sinh ra từ sự phân mảnh của gốc fucose ở phía đầu khử được sulfate hóa kép ở vị trí C-2 và C-3. Như vậy, mảnh [Fuc2(SO3)3]3- tại m/z 182,33 sẽ có cấu tạo như được miêu ta trên hình 3.17B. Hình 3.17. Phổ MALDI-TOF/MS/MS của [Fuc2(SO3Na)2 - Na]- tại m/z 491,00 (A) và CID ESI-MS/MS của [Fuc2(SO3)3]3− tại m/z 182,33 (B)
20 Tiếp theo chúng tôi nghiên cứu đặc trưng cấu trúc của các mảnh với số khối m/z 405,10 và 507,03 đây lần lượt là các mảnh disacarit có chứa galactose [FucGal(SO3-)]- và [FucGal(SO3-)2]2- (bảng 3.11). Kết quả phân tích phổ khối nhiều lần MALDI-TOF/MS/MS của các mảnh ion này cho thấy vị trí liên kết thích hợp nhất của các gốc galactose là điểm cuối của đầu mạch không khử. Các kết quả này chỉ ra rằng các gốc galactose có thể ở vị trí cuối cùng trên các đoạn mạch có cấu tạo là các gốc α-L- Fucp liên kết 3. Để làm sáng tỏ thêm nhận định trên, chúng tôi tiến hành phân tích phổ khối nhiều lần ESI-MS/MS của mảnh ion [GalFuc(SO3-)3]3- ở số khối m/z 187,65 (Hình 3.18) Hình 3.18. Phổ khối nhiều lần ESI-MS/MS của mảnh ion [GalFuc(SO3-)3]3- tại số khối m/z 187,65 Trên phổ ESI-MS/MS của mảnh [GalFuc(SO3)3]3- m/z 187,65 cho thấy tín hiệu mạnh nhất là mảnh ở m/z 159,97 của ion B′1 (phông in nghiêng để ký hiệu là ion hỗn hợp và dấu “′” để ký hiệu ion được sulfate hóa kép) tương ứng với gốc galactose sulfate hóa kép ở phía đầu mạch không khử chiếm đa số (hình 3.18). Bên cạnh đó, tín hiệu khá cao của mảnh ion 0,2A1 ở m/z 182,99 và 0,2X1 ở m/z 138,97 chỉ ra sự có mặt của gốc fucose không khử, được sulfate hóa ở vị trí C-2 và C-4, kết hợp với tín hiệu ở của mảnh ion 0,3A1 ở m/z 168,98 cho thấy nhóm sulfate ở vị trí C-3 của gốc galactose phía đầu mạch khử. Như vậy, mảnh [GalFuc(SO3)3]3- m/z 187,65 là hỗn hợp của hai disacarit có cấu tạo như được trình bay trong bảng 3.11 và hình 3.18. Kết quả phân tích phổ ESI-MS/MS của ion triply sulfated tetrasacarit [Fuc3Gal(SO3)3]3- ở m/z 285,03 (Hình 3.19) cho thấy khả năng mảnh này tồn tại ít nhất 3 biến thể cấu trúc (bảng 3.11). Lần đầu tiên, bằng phương pháp phân tích phổ khối nhiều lần MS/MS của